建立共培养模型并检测Activin A表达
验证DPSC-HUVEC直接共培养是否促进Activin A表达和分泌。
将DPSCs和HUVECs以1:1比例直接共培养,或通过Transwell间接共培养,并通过ELISA和qRT-PCR检测Activin A和Follistatin的表达和分泌水平。
Activin a regulates vascular formation and stabilization in direct coculture of dental pulp stem cells and endothelial cells
包含直接/间接共培养模型、条件培养基处理、细胞功能实验(增殖、迁移、管形成、出芽)、机制验证(VEGFR表达、siRNA/敲低)等多层次证据。
DPSC-HUVEC直接共培养模型 HUVEC单培养模型 DPSC单培养模型 Matrigel管形成模型 HUVEC球体出芽模型
DPSC和HUVEC共培养比例为1:1,共培养培养基为EGM-2与完全α-MEM按1:1混合 Activin A处理浓度为100 ng/mL VEGF处理浓度为25 ng/mL 中和Activin A IgG使用浓度为15 μg/mL DPSC和HUVEC共培养接种密度为2×10^4 cells/cm²
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证DPSC-HUVEC直接共培养是否促进Activin A表达和分泌。
将DPSCs和HUVECs以1:1比例直接共培养,或通过Transwell间接共培养,并通过ELISA和qRT-PCR检测Activin A和Follistatin的表达和分泌水平。
探究Activin A是否促进DPSC向平滑肌细胞分化。
用不同浓度Activin A(25、50、100 ng/mL)处理DPSC 6天,通过Western blot检测SMC标志物(α-SMA、Calponin 1、SM22α)的表达。
验证Activin A对HUVEC增殖、迁移、管形成和出芽等血管生成功能的作用。
用Activin A(100 ng/mL)或VEGF(25 ng/mL)处理HUVEC,通过CCK-8、划痕、Matrigel管形成和球体出芽实验评估其功能。
确认DPSC-HUVEC共培养分泌的Activin A是否介导对HUVEC血管生成的抑制作用。
用DPSC单培养条件培养基(D-CM)和DPSC-HUVEC共培养条件培养基(D+E-CM)处理HUVEC,并加入中和Activin A抗体,检测HUVEC功能变化。
阐明Activin A是否通过调节VEGF受体平衡影响血管生成。
在共培养或Activin A处理的HUVEC中,通过qRT-PCR、Western blot和ELISA检测VEGFR1(FLT-1)和VEGFR2(KDR)的表达及磷酸化水平。
验证DPSC来源的Activin A对预形成血管网络稳定性的必要性。
将INHBA敲低或对照DPSC加入预形成的HUVEC管状网络,观察血管结构的稳定性变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 内皮生长培养基-2 | Lonza | CC-3162 | |
| 胎牛血清 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 共培养 | Transwell插入式培养皿 | Corning | 3450 |
| 细胞分离 | Dynabeads CD31内皮细胞分选磁珠 | Thermo Fisher Scientific | 11155D |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | APExBIO | -- |
| 药物处理 | Activin A重组蛋白 | R&D Systems | 338-AC-050 |
| 重组人VEGF165 | Peprotech | -- | |
| 管形成实验 | Matrigel基质胶 | Corning | 354234 |
| μ-玻片血管生成载玻片 | ibidi | 81506 | |
| 出芽实验 | 牛血浆纤维蛋白原 | Sigma-Aldrich | F8630 |
| RT-qPCR | PrimeScript逆转录预混液 | Takara | RR036A |
| SYBR Premix Ex Taq II实时荧光定量PCR试剂 | Takara | RR82LR | |
| StepOne实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| ELISA | Activin A酶联免疫吸附测定试剂盒 | R&D Systems | DY338 |
| Follistatin酶联免疫吸附测定试剂盒 | R&D Systems | DY669 | |
| 可溶性VEGFR1酶联免疫吸附测定试剂盒 | R&D Systems | DY321B | |
| VEGF酶联免疫吸附测定试剂盒 | R&D Systems | DY293B | |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 |
| 抗SM22α抗体 | Abcam | ab14106 | |
| 抗Calponin 1抗体 | Abcam | ab46794 | |
| 抗α-SMA抗体 | Cell Signaling Technology | 19245S | |
| 抗vWF抗体 | Abcam | ab6994 | |
| 抗CD31抗体 | Abcam | ab24590 | |
| 抗INHBA抗体 | Abcam | ab128958 | |
| 抗VEGFR1抗体 | Proteintech | 13687-1-AP | |
| 抗磷酸化VEGFR2抗体 | Cell Signaling Technology | 2478 | |
| 抗VEGFR2抗体 | Abcam | ab39638 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab181602 | |
| 基因敲低 | 靶向INHBA的慢病毒(sh-INHBA) | Santa Cruz Biotechnology | sc-39783-V |
| FLT-1小干扰RNA | Santa Cruz Biotechnology | sc-29319 | |
| 脂质体转染试剂3000 | Invitrogen | -- | |
| 统计分析 | GraphPad Prism 9.0统计软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | DPSCs和HUVECs的供应商、培养条件和传代范围;细胞培养基和添加成分 阅读提示:见Materials and Methods - Cell culture |
| DPSC-HUVEC直接共培养 | 共培养比例、接种密度、培养基组成和培养时间 阅读提示:见Materials and Methods - Direct coculture of DPSCs and HUVECs |
| Activin A处理 | Activin A处理浓度和时间;VEGF处理浓度 阅读提示:见Materials and Methods - Proliferation assay, Scratch assay, Tube formation assay, Sprouting assay |
| 条件培养基制备 | CM制备方法、稀释比例、中和抗体浓度 阅读提示:见Materials and Methods - Conditioned medium preparation |
| VEGF受体表达分析 | qRT-PCR检测的基因和时间点;ELISA检测的分泌因子;Western blot检测的蛋白 阅读提示:见Materials and Methods - qRT-PCR, ELISA, Western blot 以及 Results - Upregulation of VEGFR1 in DPSC-HUVEC coculture |
| 基因敲低实验 | shRNA或siRNA的目标基因、转染方法和效率验证 阅读提示:见Materials and Methods - Cell transfection with siRNA/shRNA |
| Matrigel管形成和稳定性实验 | Matrigel浓度、种板密度、预形成网络时间、DPSC加入时间和比例 阅读提示:见Materials and Methods - Tube formation assay 和 Results - Knocking down Activin A inhibits vessel stability |
| 出芽实验 | 球体制备方法、纤维蛋白原浓度和凝固条件 阅读提示:见Materials and Methods - Sprouting assay |