验证ELANE敲低/敲除对HL60细胞粒细胞分化的恢复作用
在表达突变ELANE的HL60细胞中,检验抑制ELANE表达是否能恢复ATRA诱导的粒细胞分化。
使用siRNA敲低HL60细胞中的ELANE,并通过ATRA诱导分化,检测CD11b阳性细胞比例。
CRISPR/Cas9-mediated ELANE knockout enables neutrophilic maturation of primary hematopoietic stem and progenitor cells and induced pluripotent stem cells of severe congenital neutropenia patients
包含体外细胞系(HL60、THP-1)、患者iPSC、原代HSPC以及斑马鱼体内移植模型等多个独立证据层级,并进行了功能验证(吞噬、ROS、趋化)和机制验证(UPR标志物)。
携带ELANE突变的患者来源iPSC 携带ELANE突变的患者原代CD34+ HSPC 表达突变ELANE的HL60细胞系 斑马鱼胚胎异种移植模型
ELANE基因编辑效率:通过TIDE分析评估,范围27%-94% 基因编辑方式:CRISPR/Cas9 RNP电穿孔,gRNA 8 μg,Cas9 15 μg 粒细胞分化检测:CD15+CD11b+CD45+细胞比例 功能验证:吞噬、ROS产生、趋化性 机制验证:UPR基因BiP和抗凋亡因子Bcl-xl的表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在表达突变ELANE的HL60细胞中,检验抑制ELANE表达是否能恢复ATRA诱导的粒细胞分化。
使用siRNA敲低HL60细胞中的ELANE,并通过ATRA诱导分化,检测CD11b阳性细胞比例。
设计并验证能有效敲除ELANE基因的sgRNA,实现对NE蛋白的完全敲除。
设计靶向ELANE外显子2的gRNA,与Cas9蛋白形成RNP复合物,在THP-1细胞中验证敲除效率。
在患者来源的iPSC中,检验ELANE敲除能否恢复其向中性粒细胞分化的能力。
通过电穿孔将ELANE特异性RNP导入患者iPSC,筛选单克隆,并通过EB分化法观察粒细胞生成情况。
评估在治疗相关环境中,ELANE敲除能否恢复患者原代HSPC的粒细胞分化。
用ELANE特异性RNP电穿孔患者和健康供者的CD34+ HSPC,并在液体培养中分化为中性粒细胞,检测分化和形态。
检测ELANE敲除生成的中性粒细胞是否具有正常的ROS产生、吞噬和趋化功能。
对分化14天的ELANE KO中性粒细胞进行ROS检测、吞噬实验(使用荧光标记的S. aureus和pHrodo E. coli粒子)以及趋化实验。
在体内模型中验证人类ELANE KO中性粒细胞是否具有迁移和吞噬能力。
将荧光标记的人类ELANE KO PMN注射到斑马鱼胚胎的Cuvier管,并在尾部注射S. aureus BioParticles,通过共聚焦成像观察。
检测ELANE敲除是否恢复与ELANE突变相关的UPR和凋亡标志物的异常表达。
通过qPCR检测ELANE KO iPSC来源的HSPC或中性粒细胞中Bcl-xl和BiP的mRNA表达水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞分离 | Ficoll密度梯度离心 | -- | -- |
| 人CD34祖细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotech | 130-046-703 | |
| 细胞培养 | Stemline II造血干细胞扩增培养基 | Sigma Aldrich | 50192 |
| Geltrex LDEV-free低生长因子基底膜基质 | Thermo Fisher Scientific | A1413201 | |
| StemFlex培养基 | Thermo Fisher Scientific | A3349401 | |
| RevitaCell补充剂 | Thermo Fisher Scientific | A2644501 | |
| RPMI-1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | Gemini Bio Products | -- | |
| 细胞因子 | 白介素-3 | R&D Systems | -- |
| 白介素-6 | R&D Systems | -- | |
| 促血小板生成素 | R&D Systems | -- | |
| 干细胞因子 | R&D Systems | -- | |
| FMS样酪氨酸激酶3配体 | R&D Systems | -- | |
| 基因编辑 | Amaxa核转染系统(P3 primary试剂盒) | -- | V4XP-3024 |
| Cas9蛋白 | Integrated DNA Technologies | -- | |
| 引导RNA | Integrated DNA Technologies | -- | |
| 小干扰RNA | -- | -- | |
| CFU分析 | IMDM培养基 | Stemcell Technologies | 07700 |
| Methocult半固体培养基 | Stemcell Technologies | H4435 | |
| 吞噬实验 | pHrodo Green大肠杆菌生物颗粒偶联物 | -- | -- |
| 活细胞成像 | IncuCyte ZOOM系统 | -- | -- |
| 流式分析 | CD11b抗体 | -- | -- |
| Western blot | 抗NE抗体 | -- | -- |
| 抗α-微管蛋白抗体 | -- | -- | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | CD34+ HSPC分离方法(Ficoll和磁珠分选),培养密度2 x 105 cells/mL,培养基Stemline II,细胞因子组分和浓度(IL-3、IL-6、TPO各20 ng/mL,SCF、FLT-3L各50 ng/mL) 阅读提示:Methods - Cell culture |
| 基因编辑 | 电穿孔参数(Amaxa系统,P3试剂盒),RNP组成(8 μg gRNA,15 μg Cas9),细胞数量1×10^6 阅读提示:Methods - CRISPR/Cas9-gRNA RNP mediated ELANE KO |
| 粒细胞分化 | HL60细胞分化使用2 μM ATRA,5天;iPSC分化使用EB法,约30天;HSPC分化使用液体培养14天 阅读提示:Methods - 相关分化方法,Results - 相应结果部分 |
| 功能检测 | 吞噬实验使用的BioParticles类型(S. aureus),孵育时间2小时,比例100:1;ROS检测使用fMLP激活;趋化实验使用fMLP 阅读提示:Methods - In vitro phagocytosis assay, Results - 功能验证部分 |
| 统计分析 | 统计方法(two-sided, unpaired Student's t-test) 阅读提示:Methods - Statistical analysis |