PFF注射与病理诱导
在PPN中注射PFF以诱导αSyn病理,并评估病理向输入连接组的传播。
向C57BL/6J小鼠PPN注射550 nL PFF(2.5 µg/µL),12周后免疫组化检测p-αSyn。
Mapping cellular vulnerability in Parkinson's disease using retro-AAVs and preformed α-synuclein fibrils
结合PFF注射、逆行AAV示踪、轴突乔木量化、线粒体氧化应激测量和全脑病理评估,包含体内功能验证和机制关联分析。
C57BL/6J野生型小鼠 PV-Cre杂合小鼠 基于AAV的逆行示踪模型 PFF注射的α-突触核蛋白病小鼠模型
PFF注射浓度2.5 µg/µL,体积550 nL,分两点注射 PFF注射后12周进行病理评估 AAV-retro-Cre注射体积100 nL,AAV9-Flex-eGFP注射体积25 nL mito-roGFP注射体积250 nL,注射后14天进行成像 使用C57BL/6J小鼠,2-3月龄,雌雄比例相似
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在PPN中注射PFF以诱导αSyn病理,并评估病理向输入连接组的传播。
向C57BL/6J小鼠PPN注射550 nL PFF(2.5 µg/µL),12周后免疫组化检测p-αSyn。
绘制PPN的输入连接组,并评估解剖连接强度与病理分布的关系。
向PPN注射AAV-retro-Cre,4周后检测Cre表达,共分析129个脑区的像素阳性率。
确定BST、CEA、SNr和DN的主要输出区,并比较这些区域的轴突乔木大小。
在PPN注射AAV-retro-Cre后4周,向各区域注射AAV9-Flex-eGFP,2周后检测eGFP,量化轴突投影面积并归一化至起始细胞数。
比较易感(BST、CEA)和抵抗(SNr、DN)神经元的基础线粒体氧化水平。
在PPN注射AAV-retro-Cre后4周,向各区域注射AAV9-mito-roGFP,2周后制备脑片,用双光子显微镜测量roGFP氧化比例。
比较不同脑区PFF注射后全脑p-αSyn病理的总负担。
向九个不同脑区(CEA、BST、SNc、LC/PB、GRN、VM、SNr、APN、SCm)注射等量PFF,12周后量化全脑p-αSyn阳性面积。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| PFF制备 | 恒温混匀仪 | Eppendorf | -- |
| Branson数字超声破碎仪 | Branson | -- | |
| TEM分析 | 铜网 | Electron Microscopy Sciences | -- |
| 甲酸铀酰 | -- | -- | |
| Philips/FEI BioTwin CM120透射电子显微镜 | Philips/FEI | -- | |
| 细胞实验 | Triton X-100 | -- | -- |
| 免疫染色 | 抗αSyn抗体 | Abcam | ab51253 |
| 立体定位注射 | AAV2-retro-Cre | Addgene | 105553-AAVrg |
| AAV9-Flex-eGFP | Addgene | 51502-AAV9 | |
| 线粒体氧化应激测量 | AAV9-mito-roGFP | Virovek | 15-373 |
| 立体定位注射 | 立体定位仪 | David Kopf Instruments | -- |
| Angle Two系统 | Leica Biosystems | -- | |
| P-97拉针仪 | Sutter Instruments | -- | |
| IM-300微注射器 | Narishige | -- | |
| 组织处理 | OCT包埋剂 | Tissue Tek | -- |
| 组织切片 | 低温恒温切片机 | Leica | -- |
| 免疫染色 | 正常驴血清 | -- | -- |
| DAPI | Sigma-Aldrich | D9542-5MG | |
| ProLong Diamond抗淬灭封片剂 | Invitrogen | P36965 | |
| 生物素化抗兔二抗 | Jackson ImmunoResearch | 711-065-152 | |
| 链霉亲和素AlexaFluor647 | Jackson ImmunoResearch | 016-600-084 | |
| 成像 | TCS SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| AxioImager M2显微镜 | Zeiss | -- | |
| ORCA-Flash 4.0 LT CMOS相机 | Hamamatsu Photonics | C11440-42U | |
| 双光子成像 | 振动切片机 | Leica | -- |
| Ultima激光扫描显微镜系统 | Bruker | -- | |
| Chameleon Ultra II激光器 | Coherent | -- | |
| 二硫苏糖醇 | -- | -- | |
| 醛硫醇 | -- | -- | |
| 免疫染色 | 抗Cre重组酶抗体 | Merck Millipore | AB3120 |
| 轴突乔木分析 | 抗eGFP抗体 | Merck Millipore | AB16901 |
| qPCR | TRIzol试剂 | ThermoFisher Scientific | -- |
| TURBO DNase | ThermoFisher Scientific | -- | |
| iScript cDNA合成试剂盒 | Bio-Rad | -- | |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| iTaq SYBR Green Supermix(含ROX) | Bio-Rad | -- | |
| 数据分析 | GraphPad Prism | GraphPad Software | -- |
| 图像处理 | FIJI | -- | -- |
| Adobe Illustrator | Adobe | 25.4 | |
| 立体定位注射 | 异氟烷 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| PFF制备与注射 | PFF浓度、体积、注射位点坐标、注射后取材时间 阅读提示:Methods: Preparation of purified mouse αSyn PFFs and mouse αSyn monomers; Stereotaxic injections; Table S1 |
| 逆行示踪 | AAV-retro-Cre体积、注射位点、表达时间 阅读提示:Methods: Stereotaxic injections; Results: Fig. 1 |
| 轴突乔木量化 | AAV9-Flex-eGFP体积、注射位点、起始细胞数量、切片间隔 阅读提示:Methods: Axonal arbor analysis; Results: Fig. 2 |
| 线粒体氧化应激测量 | AAV9-mito-roGFP体积、注射位点、成像时间、溶液成分 阅读提示:Methods: Two photon laser scanning microscopy for ex vivo redox measurements |
| 全脑病理评估 | PFF注射体积、浓度、取材时间、切片间隔、病理定量方法 阅读提示:Methods: Whole-brain p-αSyn assessment for different seeding sites; Results: Fig. 4 |