小鼠模型构建与基因敲除验证
构建全身性和细胞特异性miR-146a敲除小鼠,并验证敲除效率。
使用CRISPR-Cas9技术生成全身性、VSMC特异性和巨噬细胞特异性miR-146a敲除小鼠,通过PCR和测序确认基因型。
Genetic Ablation of miR-146a Induces Abdominal Aortic Aneurysm Formation by Intensifying Inflammatory M1-Like Macrophages Polarization and Vascular Smooth Muscle Cell Phenotypic Switching
包含全身性、细胞特异性敲除小鼠模型、Ang II和PPE诱导的AAA模型,并经Western blot、流式细胞术、免疫组化及Notch1抑制剂挽救实验等多层级验证。
C57BL/6J小鼠Ang II诱导AAA模型 C57BL/6J小鼠PPE诱导AAA模型 全身性miR-146a敲除小鼠 VSMC特异性miR-146a敲除小鼠 巨噬细胞特异性miR-146a敲除小鼠 THP-1细胞
Ang II灌注剂量为1000 ng/kg/min,持续28天 PPE浓度为0.2 U,作用于腹主动脉5分钟 dibenzazepine腹腔注射剂量为20 μmol/kg/天 miR-146a敲除小鼠基因型确认使用PCR及测序 M1/M2巨噬细胞极化通过流式细胞术检测CD86和CD206标记
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建全身性和细胞特异性miR-146a敲除小鼠,并验证敲除效率。
使用CRISPR-Cas9技术生成全身性、VSMC特异性和巨噬细胞特异性miR-146a敲除小鼠,通过PCR和测序确认基因型。
建立Ang II和PPE诱导的AAA模型,比较miR-146a敲除对AAA发生的影响。
对小鼠进行Ang II (1000 ng/kg/min) 或PPE (0.2 U) 处理,28天或14天后评估AAA形成。
检测miR-146a敲除后主动脉炎症和弹性蛋白降解的变化。
通过免疫组化、Western blot和RT-qPCR检测促炎标志物(COX2、MMP2、MMP9、CCL2)和弹性蛋白降解评分。
评估miR-146a缺失对主动脉巨噬细胞M1/M2极化的影响。
通过流式细胞术分析CD86+CD206- M1样和CD86-CD206+ M2样巨噬细胞比例,并在THP-1细胞中验证。
检测miR-146a对血管平滑肌细胞表型转换的影响。
在Ang II灌注7天后,通过Western blot和RT-qPCR检测收缩蛋白CNN1、SM22α、α-SMA的表达。
验证miR-146a通过Notch1信号发挥保护作用。
用dibenzazepine抑制Notch1,观察对AAA表型和M1/M2标志物的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| Ang II灌注模型 | 血管紧张素II | Sigma | A9525 |
| 微型渗透泵 | ALZET, DURECT Corporation | Model 2004 | |
| Notch1抑制 | 二苯并氮杂卓 | -- | -- |
| PPE诱导模型 | 猪胰弹性蛋白酶 | -- | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Beyotime | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solabio | -- | |
| 抗COX2抗体 | Abcam | ab179800 | |
| 抗MMP2抗体 | Abcam | ab37150 | |
| 抗MMP9抗体 | Abcam | ab58803 | |
| 抗CCL2抗体 | Abcam | ab25124 | |
| 抗CNN1抗体 | Abcam | ab46794 | |
| 抗SM22α抗体 | Abcam | ab14106 | |
| 抗αSMA抗体 | Abcam | ab124964 | |
| 抗Notch1抗体 | Cell Signaling Technology | 3608S | |
| 抗iNOS抗体 | Proteintech | 18985-1-AP | |
| 抗Arg1抗体 | Proteintech | 16001-1-AP | |
| 抗CD206抗体 | Proteintech | 60143-1-Ig | |
| 抗β-actin抗体 | Abcam | ab8226 | |
| HRP标记二抗 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 增强化学发光底物 | GE Healthcare Life Sciences | RPN2235 | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen, Thermo Fisher Scientific | 15596018CN |
| SYBR Green一步法qRT-PCR试剂盒 | Beyotime | D7268S | |
| 免疫组化 | 抗MMP2抗体 | Abcam | ab37150 |
| 抗MMP9抗体 | Abcam | ab228402 | |
| 抗CCL2抗体 | Abcam | ab25124 | |
| 抗IL6抗体 | Abcam | ab7737 | |
| 抗CD68抗体 | Abcam | ab283654 | |
| 流式细胞术 | 抗F4/80-PE抗体 | BioLegend | 123109 |
| 抗CD86-FITC抗体 | BioLegend | 105005 | |
| 抗CD206-APC抗体 | BioLegend | 141707 | |
| XI型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 1-s型透明质酸酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 脱氧核糖核酸酶I | Sigma-Aldrich | -- | |
| I型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 血压测量 | 尾套血压测量系统 | Softron | BP-2010 |
| 图像分析 | ImageJ软件 | National Institutes of Health | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、年龄和性别:C57BL/6J,10-12周龄,雄性;Ang II剂量:1000 ng/kg/min,持续28天;PPE剂量:0.2 U,作用5分钟 阅读提示:Methods: Animals, Ang II Infusion, PPE-Induced Mouse AAA Model |
| 基因敲除小鼠构建 | CRISPR-Cas9 gRNA序列、供体载体、繁殖策略及基因型确认引物 阅读提示:Methods: Generate Global miR-146a Knockout Mice |
| 炎症标志物检测 | 抗体货号及稀释比例,如COX2 (ab179800)、MMP2 (ab37150) 1:1000等;qPCR引物序列 阅读提示:Methods: Western Blot, Real-Time Quantitative PCR |
| 巨噬细胞极化分析 | 流式抗体(F4/80-PE, CD86-FITC, CD206-APC)及稀释比例;主动脉消化酶浓度和时间 阅读提示:Methods: Flow Cytometry |
| Notch1抑制实验 | dibenzazepine剂量和给药方式:20 μmol/kg/天,腹腔注射;溶剂配制;处理时间 阅读提示:Methods: Ang II Infusion and Dibenzazepine Administration |