EVA1A通过调节自噬促进扰动流下内皮细胞凋亡和炎症激活

EVA1A (Eva-1 Homolog A) Promotes Endothelial Apoptosis and Inflammatory Activation Under Disturbed Flow Via Regulation of Autophagy

作者信息Lindsay Canham, Sam Sendac, Mannekomba R Diagbouga, Elena Wolodimeroff, Daniela Pirri, Blanca Tardajos Ayllon, Shuang Feng, Celine Souilhol, Timothy J A Chico, Paul C Evans, Jovana Serbanovic-Canic
PMID36794585
发布时间2023-04
DOI10.1161/ATVBAHA.122.318110

实验完整度

包含体外细胞实验(人脐静脉内皮细胞、人主动脉内皮细胞)、体内小鼠和猪主动脉样本分析以及斑马鱼活体验证,并有功能验证(凋亡、通透性、炎症)和机制验证(自噬通量、TWIST1调控)。

主要模型

人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人主动脉内皮细胞(HAECs) 猪主动脉内皮细胞 小鼠主动脉内皮 斑马鱼胚胎(flk1:EGFP-NLS转基因系)

重点核对

EVA1A在扰动流下的表达上调在猪、小鼠和人内皮细胞中验证 EVA1A敲低对扰动流诱导的内皮凋亡、通透性和炎症标志物的影响 EVA1A对自噬通量的影响需在巴佛洛霉素处理下检测LC3-II和p62水平 TWIST1敲低对EVA1A表达的影响 斑马鱼体内EVA1A敲低对无血流诱导的内皮凋亡的影响

摘要

背景:血流对内皮细胞施加的血流动力学壁面剪切应力决定了动脉粥样硬化病变的空间分布。低剪切应力且方向逆转的扰动流通过调节内皮细胞的活力和功能促进动脉粥样硬化,而单向且高剪切应力的非扰动流则具有动脉粥样硬化保护作用。在此,我们研究了EVA1A(eva-1 homolog A),一种与自噬和凋亡相关的溶酶体和内质网相关蛋白,在剪切应力调节的内皮功能障碍中的作用。方法:使用猪和小鼠主动脉以及暴露于血流中的培养人内皮细胞研究了剪切应力对EVA1A表达的影响。分别在体外使用siRNA和在体内使用吗啉代寡核苷酸在人内皮细胞和斑马鱼中沉默EVA1A。结果:EVA1A在促动脉粥样硬化的扰动流下在mRNA和蛋白水平上均被诱导。EVA1A沉默导致扰动流下的内皮细胞凋亡、通透性和炎症标志物表达降低。使用自噬溶酶体抑制剂巴佛洛霉素结合自噬标志物LC3-II和p62评估自噬通量,结果显示在扰动流下EVA1A敲低促进自噬,但在非扰动流下则不然。阻断自噬通量导致暴露于扰动流的EVA1A敲低细胞凋亡增加,表明自噬介导了扰动流对内皮功能障碍的影响。机制上,EVA1A的表达通过TWIST1受血流方向调控。在体内,敲低斑马鱼中EVA1A直系同源物导致内皮细胞凋亡减少,证实了EVA1A在内皮中的促凋亡作用。结论:我们确定了EVA1A是一个新的血流敏感基因,通过调节自噬介导促动脉粥样硬化的扰动流对内皮功能障碍的影响。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
EVA1A在剪切应力调节的内皮功能障碍中起什么作用?
核心机制
扰动流通过TWIST1上调EVA1A,EVA1A减少自噬通量,导致内皮细胞凋亡和炎症激活。
主要证据
在猪、小鼠和人类内皮细胞中验证EVA1A在扰动流下上调;HUVECs中EVA1A敲低减少凋亡、通透性和炎症;自噬通量实验表明EVA1A敲低增加自噬通量;斑马鱼中敲低EVA1A减少无血流诱导的凋亡。
研究意义
EVA1A作为新的血流敏感基因,可能成为治疗心血管疾病的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

确认EVA1A在体内和体外对剪切应力的反应

确定EVA1A是否受血流剪切应力调节,并区分扰动流和非扰动流的影响。

从猪主动脉分离内皮细胞,通过qRT-PCR检测EVA1A mRNA;对小鼠主动脉进行en face染色检测EVA1A蛋白;培养HUVECs和HAECs暴露于流动,通过qRT-PCR和免疫染色检测EVA1A表达。

2

评估EVA1A对内皮细胞功能的影响

确定EVA1A是否影响内皮细胞的凋亡、通透性和炎症激活。

HUVECs转染EVA1A siRNA,暴露于流动,检测活性caspase 3阳性细胞比例评估凋亡;使用Transwell实验评估通透性;qRT-PCR检测炎症标志物SELE、ICAM1、VCAM1、IL8 mRNA;Western blot检测VCAM1蛋白;单核细胞黏附实验评估功能性炎症反应。

3

探索EVA1A对自噬通量的影响

确定EVA1A是否通过调节自噬影响内皮细胞功能障碍。

HUVECs转染EVA1A siRNA,暴露于DF,使用巴佛洛霉素处理,Western blot检测LC3-II和p62水平,评估自噬通量。

4

研究EVA1A表达的调控机制

确定EVA1A的剪切敏感调控是否依赖于流动方向或剪切力大小,并识别上游转录因子。

使用Ibidi系统对HAECs施加不同流动模式,qRT-PCR检测EVA1A表达;通过siRNA敲低TWIST1检测EVA1A表达;使用UCSC和JASPAR数据库进行转录因子结合位点预测。

5

验证EVA1A在体内对细胞凋亡的作用

在斑马鱼体内验证EVA1A对内皮细胞凋亡的作用。

使用吗啉代寡核苷酸敲低斑马鱼eva1a-2,通过RT-PCR和qRT-PCR验证敲低效率,通过活性caspase 3染色评估内皮细胞凋亡。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
胶原酶Sigma--
RNeasy Mini试剂盒Qiagen74104
人脐静脉内皮细胞PromoCell--
人主动脉内皮细胞PromoCell--
内皮细胞生长培养基----
Ibidi µ-Slides I0.4ibidi--
Ibidi泵系统ibidi--
肿瘤坏死因子GibcoPHC3015
小干扰RNADharmaconL-014799-02, L-006434-00, D-001810-10
Neon转染系统Invitrogen--
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂ThermoFisher--
EVA1A抗体----
CD31抗体----
活性caspase 3抗体----
PCNA抗体----
CDH5抗体----
VCAM1抗体----
LC3抗体----
p62抗体----
calnexin抗体----
AlexaFluor偶联二抗ThermoFisher--
DAPISigma--
To-Pro-3ThermoFisher--
ProLong Gold封片剂ThermoFisher--
共聚焦显微镜(Olympus FV1000)Olympus--
宽场荧光显微镜(Leica DMI4000B)Leica--
Fiji软件----
iScript cDNA合成试剂盒Bio-Rad1708891
SsoAdvanced通用SYBR Green supermixBio-Rad172-5271
Transwell小室CorningCC401
罗丹明标记的白蛋白----
牛血浆白蛋白----
Varioskan荧光计Thermo Scientific--
ECL Prime化学发光底物GE Healthcare--
Gel Doc XR+成像系统Bio-Rad--
CD14磁珠Miltenyi Biotec130-118-906
CellTracker Red CMTPXInvitrogenC34552
吗啉代反义寡核苷酸GeneTools--
BioMix Red试剂盒Bioline--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和流动模型
细胞来源(PromoCell)、代数(p3-p5)、流动平台(轨道摇床或Ibidi)的具体参数(转速、剪切力水平、时间)
阅读提示:Methods: EC Culture and Exposure to WSS
基因沉默
siRNA序列及转染方法(Neon或Lipofectamine)、细胞类型(HUVEC或HAEC)及siRNA浓度(50或20 nM)
阅读提示:Methods: Gene Silencing
自噬通量检测
巴佛洛霉素浓度(50 nM)和处理时间(最后4小时),对照组DMSO浓度(0.05%),测量LC3-II和p62的Western blot条件
阅读提示:Methods: Western Blotting, Results: EVA1A Promotes EC Dysfunction by Regulating Autophagic Flux...
体内斑马鱼实验
斑马鱼品系(flk1:EGFP-NLS),MO注射量和时间(3 ng,1-4细胞期),sih MO用于无血流模型,凋亡检测方法(活性caspase 3染色)
阅读提示:Methods: Zebrafish Studies, Results: EVA1A Regulates EC Apoptosis In Vivo in Zebrafish Embryos
统计设计
统计检验方法(如ANOVA、Wilcoxon)、样本量(n≥3)、重复数、数据展示(mean±SEM)
阅读提示:Methods: Statistical Analysis