Notch激活导致小鼠血管周围脂肪组织的病理性转化

Pathological Conversion of Mouse Perivascular Adipose Tissue by Notch Activation

作者信息Joshua M Boucher, Larisa Ryzhova, Anne Harrington, Jessica Davis-Knowlton, Jacqueline E Turner, Emily Cooper, David Maridas, Sergey Ryzhov, Clifford J Rosen, Calvin P H Vary, Lucy Liaw
PMID32640901
发布时间2020-09
DOI10.1161/ATVBAHA.120.314731

实验完整度

包含体内小鼠模型(HFD、CR、Adipoq-Cre;N1ICD转基因)、蛋白质组学、组织学、免疫印迹、流式细胞术和原代细胞分化实验等多层次验证。

主要模型

C57BL/6J小鼠 Adipoq-Cre;N1ICD转基因小鼠 小鼠胸主动脉PVAT(tPVAT) PVAT来源的前脂肪细胞

重点核对

HFD喂养:60%高脂饮食(Research Diets D12492)喂养12周 热量限制:30% CR饮食喂养5周 Notch1激活:Adipoq-Cre;N1ICD小鼠,标准饮食喂养12周 原代细胞分化:10μM DAPT处理,分化3天+脂质积累5天 蛋白质组学:SWATH-MS,数据已上传至PeptideAtlas

摘要

目的:血管周围脂肪组织(PVAT)包裹动脉,支持健康的血管功能。在肥胖过程中,PVAT失去其血管保护作用。我们研究PVAT的病理性转化,涉及蛋白质谱的分子变化和脂肪细胞的功能变化。方法和结果:给C57BL6/J小鼠喂食60%高脂饮食(HFD)12周或心脏保护性30%热量限制饮食5周。蛋白质组学分析确定PVAT是一个分子学上独特的脂肪库,并鉴定了产热脂肪细胞的新标志物,如GRP75。HFD增加了PVAT和棕色脂肪中蛋白质特征的相似性,提示激活了一个保守的白色化通路。白色化表型的特点是UCP1抑制、脂质沉积增加、瘦素和炎症增加,并且特别是在PVAT中,Notch信号升高。相反,热量限制小鼠的PVAT中Notch信号降低,脂质减少。使用Adipoq-Cre品系,我们组成性激活脂肪细胞中的Notch1信号,即使在标准饮食下也模拟了HFD引起的PVAT变化。来自小鼠PVAT的前脂肪细胞表达Sca1、CD140a、Notch1和Notch2,但不表达CD105,显示与其他脂肪库的前脂肪细胞存在差异。在PVAT来源的前脂肪细胞分化过程中抑制Notch信号减少了脂质沉积和脂肪细胞标志物表达。结论:PVAT与其他脂肪库有共同特征,但具有独特的蛋白质特征,受饮食应激调节。PVAT中Notch信号升高足以通过促进脂肪生成和脂质积累来启动PVAT的病理性转化,从而可能为血管疾病启动微环境。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Notch信号在血管周围脂肪组织(PVAT)病理性转化中的作用是什么?
核心机制
Notch信号激活促进PVAT的白色化转化,通过促进脂肪生成和脂质积累,同时抑制产热基因(如UCP1),并伴随炎症增加。
主要证据
高脂饮食诱导PVAT中Notch1/2及下游靶标HES1/HEY1表达升高;组成性激活Notch1(Adipoq-Cre;N1ICD)在标准饮食下模拟HFD表型,增加脂质沉积和炎症;体外抑制Notch(DAPT)减少PVAT前脂肪细胞分化中的脂质积累和脂肪细胞标志物表达。
研究意义
Notch信号是PVAT表型的新型调控因子,可能作为缓解肥胖相关PVAT功能障碍和血管疾病的潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立饮食诱导肥胖模型

研究肥胖对PVAT表型的影响

给C57BL/6J雄性小鼠喂食60%高脂饮食(HFD)或对照饮食12周,评估体重、脂肪百分比、血糖和PVAT形态学及分子变化。

2

PVAT蛋白质组学分析

鉴定PVAT特异的蛋白质特征及饮食影响

使用SWATH质谱分析tPVAT、BAT和gWAT的蛋白质组,通过PCA和维恩图比较不同脂肪库及饮食条件下的蛋白质相似性和差异。

3

检测Notch信号在PVAT中的表达

验证HFD是否上调PVAT中的Notch信号

通过RT-PCR、免疫印迹和免疫组化检测tPVAT中Notch1、Notch2及下游靶标HES1、HEY1的表达。

4

体内Notch1激活对PVAT表型的影响

测试Notch1激活是否足以驱动PVAT病理性转化

通过Adipoq-Cre;N1ICD小鼠组成性激活脂肪细胞Notch1,在标准饮食下评估PVAT形态、脂质积累、炎症标志物及产热标志物。

5

PVAT源性前脂肪细胞的分离与表征

表征PVAT中的祖细胞及其分化能力

从tPVAT分离基质血管组分(SVF),通过流式细胞术分析细胞表面标志物(Sca1、CD31、CD140a、CD105等),并诱导其向脂肪细胞分化。

6

体外抑制Notch对前脂肪细胞分化的影响

检验Notch信号是否调节PVAT前脂肪细胞的脂质积累

在分化后期(脂质积累阶段)用DAPT抑制Notch,通过油红O染色和蛋白质印迹评估脂质积累及脂肪细胞标志物表达。

7

热量限制对PVAT中Notch信号的影响

研究热量限制是否逆转或抑制Notch信号

给小鼠喂食30%热量限制(CR)饮食5周,检测tPVAT中Notch通路相关基因和蛋白的表达及组织学变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Research Diets D12492(60%高脂饮食)Research DietsD12492
Research Diets D12450J(对照饮食)Research DietsD12450J
Research Diets D10012M(对照饮食)Research DietsD10012M
PCSK9-AAV(D377Y-mPCSK9)Addgene--
油红OSigma--
SignalStain® Boost IHC检测试剂Cell Signaling--
M.O.M.封闭液Vector Labs--
TrueVIEW自发荧光淬灭试剂盒Vector LaboratoriesSP-8400
Vectashield Hard Set防淬灭封片剂Vector Laboratories--
miRCURY试剂盒Exiqon300111
脂质裂解添加剂Exiqon300121
iScript gDNA清除cDNA合成试剂盒Biorad1725035
2x PCR预混液PromegaM7502
IQ SYBR Green SupermixBiorad1708882
RIPA裂解液----
蛋白酶/磷酸酶抑制剂混合物Cell Signaling5872S
Branson Sonifier 250超声破碎仪Branson--
BioRad DC蛋白定量试剂盒BioRad--
TGX™ FastCast™预制胶BioRad1610173,
TransBlot Turbo转印系统BioRad--
ProteoExtract试剂盒Calbiochem--
Sciex 5600 TripleTOF质谱仪Sciex--
TruStain-fcX™抗小鼠CD16/32Biolegend--
MacsQuant分析仪Miltenyi--
胶原酶BSigma--
ACK裂解液Lonza--
DMEM/F12培养基----
胎牛血清(FBS)----
Primocin抗菌剂Invitrogenant-pm-1
小鼠FGF-2Peprotech--
γ-分泌酶抑制剂(DAPT)Calbiochem--
二甲基亚砜(DMSO)----
丙二醇VWR--
Bruker minispec mq核磁共振仪Bruker--
Leica TCS SP8激光扫描共聚焦显微镜Leica--
Nanodrop 2000c分光光度计Thermo Scientific--
C1000热循环仪Biorad--
CFX Connect热循环仪Biorad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
饮食诱导肥胖模型
小鼠品系、性别、年龄、饮食组成(HFD D12492 60%脂肪)、喂养时长(12周)、对照组饮食(D12450J)、样本量(n=10/组)
阅读提示:Methods: Mice; Results: Figure 1 legend
蛋白质组学分析
SWATH-MS方法、数据归一化、差异蛋白质筛选阈值(p<0.05)、PCA参数
阅读提示:Methods: Proteomics; Results: Figure 2 legend
Notch1激活转基因模型
Adipoq-Cre;N1ICD小鼠构建、对照(-Cre和+Cre)、饮食(标准饮食)和时长(12周)、样本量(n=9/组)
阅读提示:Methods: Mice; Results: Figure 4 legend
原代细胞分化与Notch抑制
细胞来源(tPVAT SVF)、培养代数(P4-P9)、分化诱导方案(3天)、DAPT浓度(10μM)和处理时间(5天)、油红O定量方法
阅读提示:Methods: Stromal cell isolation and adipocyte differentiation; Results: Figure 7 legend
热量限制实验
小鼠品系、性别、年龄、CR饮食比例(30%)、喂养时长(5周)、对照组饮食(D10012M)、样本量(n=6)
阅读提示:Methods: Mice; Results: Figure 8 legend
动脉粥样硬化模型
PCSK9-AAV D377Y剂量(5×10^10 gc/鼠)、注射方式(眶后)、西方饮食(D12079B)及时长(12周)、评估部位(主动脉根部)
阅读提示:Methods: Mouse atherogenic model; Results: Notch-mediated whitening section