建立饮食诱导肥胖模型
研究肥胖对PVAT表型的影响
给C57BL/6J雄性小鼠喂食60%高脂饮食(HFD)或对照饮食12周,评估体重、脂肪百分比、血糖和PVAT形态学及分子变化。
Pathological Conversion of Mouse Perivascular Adipose Tissue by Notch Activation
包含体内小鼠模型(HFD、CR、Adipoq-Cre;N1ICD转基因)、蛋白质组学、组织学、免疫印迹、流式细胞术和原代细胞分化实验等多层次验证。
C57BL/6J小鼠 Adipoq-Cre;N1ICD转基因小鼠 小鼠胸主动脉PVAT(tPVAT) PVAT来源的前脂肪细胞
HFD喂养:60%高脂饮食(Research Diets D12492)喂养12周 热量限制:30% CR饮食喂养5周 Notch1激活:Adipoq-Cre;N1ICD小鼠,标准饮食喂养12周 原代细胞分化:10μM DAPT处理,分化3天+脂质积累5天 蛋白质组学:SWATH-MS,数据已上传至PeptideAtlas
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
研究肥胖对PVAT表型的影响
给C57BL/6J雄性小鼠喂食60%高脂饮食(HFD)或对照饮食12周,评估体重、脂肪百分比、血糖和PVAT形态学及分子变化。
鉴定PVAT特异的蛋白质特征及饮食影响
使用SWATH质谱分析tPVAT、BAT和gWAT的蛋白质组,通过PCA和维恩图比较不同脂肪库及饮食条件下的蛋白质相似性和差异。
验证HFD是否上调PVAT中的Notch信号
通过RT-PCR、免疫印迹和免疫组化检测tPVAT中Notch1、Notch2及下游靶标HES1、HEY1的表达。
测试Notch1激活是否足以驱动PVAT病理性转化
通过Adipoq-Cre;N1ICD小鼠组成性激活脂肪细胞Notch1,在标准饮食下评估PVAT形态、脂质积累、炎症标志物及产热标志物。
表征PVAT中的祖细胞及其分化能力
从tPVAT分离基质血管组分(SVF),通过流式细胞术分析细胞表面标志物(Sca1、CD31、CD140a、CD105等),并诱导其向脂肪细胞分化。
检验Notch信号是否调节PVAT前脂肪细胞的脂质积累
在分化后期(脂质积累阶段)用DAPT抑制Notch,通过油红O染色和蛋白质印迹评估脂质积累及脂肪细胞标志物表达。
研究热量限制是否逆转或抑制Notch信号
给小鼠喂食30%热量限制(CR)饮食5周,检测tPVAT中Notch通路相关基因和蛋白的表达及组织学变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 饮食诱导肥胖模型 | 小鼠品系、性别、年龄、饮食组成(HFD D12492 60%脂肪)、喂养时长(12周)、对照组饮食(D12450J)、样本量(n=10/组) 阅读提示:Methods: Mice; Results: Figure 1 legend |
| 蛋白质组学分析 | SWATH-MS方法、数据归一化、差异蛋白质筛选阈值(p<0.05)、PCA参数 阅读提示:Methods: Proteomics; Results: Figure 2 legend |
| Notch1激活转基因模型 | Adipoq-Cre;N1ICD小鼠构建、对照(-Cre和+Cre)、饮食(标准饮食)和时长(12周)、样本量(n=9/组) 阅读提示:Methods: Mice; Results: Figure 4 legend |
| 原代细胞分化与Notch抑制 | 细胞来源(tPVAT SVF)、培养代数(P4-P9)、分化诱导方案(3天)、DAPT浓度(10μM)和处理时间(5天)、油红O定量方法 阅读提示:Methods: Stromal cell isolation and adipocyte differentiation; Results: Figure 7 legend |
| 热量限制实验 | 小鼠品系、性别、年龄、CR饮食比例(30%)、喂养时长(5周)、对照组饮食(D10012M)、样本量(n=6) 阅读提示:Methods: Mice; Results: Figure 8 legend |
| 动脉粥样硬化模型 | PCSK9-AAV D377Y剂量(5×10^10 gc/鼠)、注射方式(眶后)、西方饮食(D12079B)及时长(12周)、评估部位(主动脉根部) 阅读提示:Methods: Mouse atherogenic model; Results: Notch-mediated whitening section |