鉴定复发AML中的RUNX1C上调和启动子甲基化
确定RUNX1C在化疗耐药AML中的表达变化及其表观遗传调控机制。
对19对AML患者诊断和复发样本进行RNA-seq分析,鉴定RUNX1C上调;并通过增强型RRBS分析P2启动子甲基化,发现复发样本中P2启动子高甲基化。
An Isoform-Specific RUNX1C-BTG2 Axis Governs AML Quiescence and Chemoresistance
包含患者样本转录组和甲基化分析、细胞系功能实验(CRISPR敲除、过表达)、CUT&RUN机制验证、PDX、动物模型和ASO治疗验证。
MOLM-13细胞系 THP-1细胞系 MOLM-13异种移植小鼠模型 AML患者样本(配对诊断与复发骨髓样本)
RUNX1C表达水平(在复发样本中升高) P2启动子甲基化水平(在复发样本中升高) RUNX1C N端区域(对化疗耐药和静息至关重要) BTG2表达水平(与化疗反应相关) 体内模型处理:doxycycline诱导Cas13表达和cytarabine(60 mg/kg)腹腔注射
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定RUNX1C在化疗耐药AML中的表达变化及其表观遗传调控机制。
对19对AML患者诊断和复发样本进行RNA-seq分析,鉴定RUNX1C上调;并通过增强型RRBS分析P2启动子甲基化,发现复发样本中P2启动子高甲基化。
验证P2启动子甲基化是否调控RUNX1C表达。
在MOLM-13细胞中利用dCas9-Dnmt3a靶向P2启动子进行特异性甲基化,检测RUNX1A/B和RUNX1C表达变化。
确定RUNX1C是否影响AML细胞对化疗药物的敏感性。
在MOLM-13细胞中通过CRISPR删除P1启动子(降低RUNX1C)或CRISPRa激活P1启动子(升高RUNX1C),检测细胞对阿糖胞苷的IC50变化。
确定RUNX1C N端区域是否对化疗耐药和细胞静息至关重要。
过表达RUNX1C WT和N端缺失突变体,检测化疗敏感性和细胞周期分布(Ki-67/DAPI)。
鉴定RUNX1C特异性结合的基因,特别是N端区域依赖的靶标。
在MOLM-13细胞中表达FLAG标记的RUNX1A/B/C和ΔN-term,进行CUT&RUN和RNA-seq分析,鉴定RUNX1C特有的结合位点和靶基因。
验证BTG2是RUNX1C直接调控的靶基因,并检验其在化疗耐药和静息中的作用。
通过CUT&RUN结合RNA-seq鉴定BTG2为RUNX1C靶标,利用CRISPR靶向BTG2启动子RUNX1基序验证直接调控,过表达BTG2检测化疗敏感性和细胞周期,敲除BTG2检测化疗敏感性。
揭示BTG2促进AML静息的分子机制。
通过长读长测序检测BTG2过表达后poly(A)尾长度变化,鉴定受影响的rRNA转录本,并检测蛋白质合成速率和rRNA稳定性。
评估在体内靶向RUNX1C mRNA是否增强化疗疗效。
使用MOLM-13-Luc异种移植小鼠模型,诱导Cas13表达并联合阿糖胞苷治疗,观察肿瘤负担和生存期。另用RUNX1C ASO处理PDX细胞,检测化疗敏感性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 聚凝胺 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 杀稻瘟菌素 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 潮霉素 | -- | -- | |
| 聚乙烯亚胺 | -- | -- | |
| Opti-MEM培养基 | -- | -- | |
| StemSpan白血病细胞培养基 | STEMCELL Technologies | -- | |
| 药物处理 | 阿糖胞苷 | MedChemExpress | HY-13605 |
| 依托泊苷 | MedChemExpress | -- | |
| 柔红霉素 | Selleckchem | -- | |
| 伊达比星 | Selleckchem | -- | |
| 多西环素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA试剂 | -- | -- | |
| NuPAGE Bis-Tris蛋白凝胶 | -- | -- | |
| 抗RUNX1抗体 | Cell Signaling Technology | 4334 | |
| 抗HA抗体 | Cell Signaling Technology | 26183 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A3854 | |
| RNA-seq | RNeasy Plus Mini试剂盒 | Qiagen | 74136 |
| QIAshredder | Qiagen | 79656 | |
| NEBNext Poly(A) mRNA磁分离模块 | New England Biolabs | E7490S | |
| NEXTFLEX Rapid Directional RNA-seq试剂盒 | PerkinElmer | -- | |
| NEXTFLEX RNA-seq条形码 | PerkinElmer | NOVA-5198-02 | |
| AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | -- | |
| NovaSeq X测序仪 | Illumina | -- | |
| 长读长测序 | Dynabeads mRNA纯化试剂盒 | Invitrogen | 61006 |
| 直接RNA测序试剂盒 | Oxford Nanopore Technologies | SQK-RNA004 | |
| SuperScript III反转录酶 | Thermo Fisher Scientific | 18080044 | |
| Agencourt RNAClean XP磁珠 | Beckman Coulter | -- | |
| Qubit荧光计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| RNA流动池 | Oxford Nanopore Technologies | FLO-PRO004RA | |
| PromethION测序仪 | Oxford Nanopore Technologies | -- | |
| CUT&RUN | CUTANA CUT&RUN试剂盒 | EpiCypher | 14-1048 |
| 抗FLAG M2抗体 | Sigma-Aldrich | F1804 | |
| CUTANA CUT&RUN文库制备试剂盒 | EpiCypher | 14-1002 | |
| 高灵敏度Bioanalyzer试剂盒 | Agilent | -- | |
| 流式细胞术 | DAPI | MilliporeSigma | D9542 |
| APC抗人Ki-67抗体 | BD Biosciences | 561277 | |
| Annexin V结合缓冲液 | BioLegend | 422201 | |
| APC Annexin V | BioLegend | 640941 | |
| Click-iT Plus OPP Alexa Fluor 647蛋白质合成检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | C10458 | |
| BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 细胞活力测定 | CellTiter-Glo检测试剂盒 | Promega | -- |
| BioTek Synergy H1酶标仪 | Agilent | -- | |
| qPCR | Verso cDNA合成试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Fast SYBR Green Plus预混液 | Applied Biosystems | -- | |
| 亚硫酸盐测序 | DNeasy血液和组织试剂盒 | Qiagen | 69504 |
| EZ DNA甲基化-Gold试剂盒 | Zymo Research | D5005 | |
| KAPA HiFi HotStart预混液 | KAPA Biosystems | KM2802 | |
| pCR4-TOPO TA载体 | Thermo Fisher Scientific | K4575J10 | |
| RNA稳定性 | RNeasy Plus Mini试剂盒 | Qiagen | 74316 |
| High-Capacity RNA-to-cDNA试剂盒 | Life Technologies | 4387406 | |
| RNA靶向 | RfxCas13d质粒 | Addgene | 138149 |
| pLenti sgRNA direct repeat载体 | Addgene | 138151 | |
| LT3GEPIR载体 | Addgene | 111177 | |
| 克隆 | In-Fusion克隆系统 | Clontech | 638909 |
| NEBuilder HiFi DNA组装 | New England Biolabs | -- | |
| Gibson组装 | New England Biolabs | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源和培养条件(RPMI/DMEM+10%FBS+1%P/S);细胞系认证和支原体检测 阅读提示:Methods: Cell Lines and Cell Culture |
| 化疗敏感性测定 | 药物浓度范围、处理时间(48小时)、IC50计算方法(非线性拟合四参数)、技术重复次数 阅读提示:Methods: Drug Treatment IC50 Measurements; Figure 2 legends |
| RUNX1C敲除/激活 | sgRNA序列和靶向位点;转导效率和筛选方法;敲除/激活效率验证(qPCR或Western blot) 阅读提示:Methods: cDNA Experiments, RNA Targeting of RUNX1C Isoform; Figure 2 legends |
| CUT&RUN | 细胞数(1百万)、抗体(anti-FLAG M2)、试剂盒、文库制备和测序平台;数据分析参数(Bowtie2、MACS2等) 阅读提示:Methods: CUT&RUN Preparation and Analysis |
| 体内动物实验 | 小鼠品系(NSG-SGM3)、年龄和性别;细胞移植数量和途径;doxycycline和cytarabine剂量、给药方式;肿瘤负荷监测时间点 阅读提示:Methods: Animal Studies; Figure 6 legends |