患者队列分析
鉴定与放射抵抗相关的基因突变。
对 75 例接受手术+辅助放化疗(SRT)的口腔癌患者肿瘤样本进行靶向二代测序,分析 325 个基因突变频率;对 60 例单纯手术(S)患者进行 NFE2L2 Sanger 测序;使用竞争风险模型评估突变对 LRF 的影响。
NFE2L2 Mutations Enhance Radioresistance in Head and Neck Cancer by Modulating Intratumoral Myeloid Cells
包含患者队列测序与生存分析、细胞系克隆形成实验、免疫正常/缺陷小鼠模型、流式细胞术及 RNA-seq 多层次证据,并进行功能与机制验证。
口腔癌患者队列(手术+辅助放化疗 vs 单纯手术) SAS 和 FaDu 人 HNSCC 细胞系 MOC1 小鼠口腔鳞癌细胞系 C57BL/6J 和 NRG 小鼠皮下移植瘤模型
NFE2L2 E79Q/E79K 突变体稳定表达细胞系的构建 放疗剂量:2 Gy × 5 次(总剂量 10 Gy)或 3 Gy × 5 次(总剂量 15 Gy) CB-839 给药方案:200 mg/kg 口服灌胃,每日两次 PMN-MDSC 流式检测标志物:CD11b+F4/80-Ly6GhighLy6Cmid 患者队列样本量:SRT 组 75 例,S 组 60 例
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定与放射抵抗相关的基因突变。
对 75 例接受手术+辅助放化疗(SRT)的口腔癌患者肿瘤样本进行靶向二代测序,分析 325 个基因突变频率;对 60 例单纯手术(S)患者进行 NFE2L2 Sanger 测序;使用竞争风险模型评估突变对 LRF 的影响。
验证 NFE2L2 突变是否导致 Nrf2 激活。
利用 CRISPR/Cas9 敲除 NFE2L2,再稳定回补 Nrf2WT、Nrf2E79Q 或 Nrf2E79K;通过 Western blot、qRT-PCR、荧光素酶报告基因、免疫荧光检测 Nrf2 及其下游靶基因的表达和活性。
评估 NFE2L2 突变对细胞内在放射敏感性的影响。
对 Nrf2WT 和 Nrf2E79Q 细胞进行不同剂量 (0-6 Gy) 照射,通过克隆形成实验检测存活分数;照射后检测 ROS 水平。
在体内评估 NFE2L2 突变对放射抵抗的影响及免疫细胞的作用。
将 Nrf2WT 或 Nrf2E79Q MOC1 细胞皮下接种至免疫正常 C57BL/6J 和免疫缺陷 NRG 小鼠,待肿瘤长至 100-150 mm3 后进行局部放疗,观察肿瘤生长和生存期。
分析 NFE2L2 突变对肿瘤免疫细胞组成的影响。
通过流式细胞术分析肿瘤中 T 细胞、巨噬细胞、PMN-MDSC 等免疫细胞的比例。
评估谷氨酰胺酶抑制剂 CB-839 能否克服 NFE2L2 突变介导的放射抵抗。
对携带 Nrf2WT 或 Nrf2E79Q 肿瘤的 C57BL/6J 小鼠进行放疗和 CB-839 联合治疗,监测肿瘤生长和生存;检测免疫细胞变化。
阐明 NFE2L2 突变调控趋化因子表达和 CB-839 作用的分子机制。
RNA-seq 分析差异表达基因和信号通路;qRT-PCR 和 Western blot 验证 TLR4 和趋化因子表达;siRNA 敲低 TLR4 验证其对趋化因子表达的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| DNA 提取 | Integra™ Miltex™ 标准活检打孔器 | Fisher Scientific | 3331AA |
| AllPrep DNA/RNA FFPE 试剂盒 | Qiagen | 80234 | |
| 细胞培养 | DMEM 培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 氢化可的松 | Sigma-Aldrich | H0135 | |
| 表皮生长因子 | Sigma-Aldrich | 01–107 | |
| 胰岛素 | Sigma-Aldrich | I0516 | |
| 基因编辑 | pSpCas9-2A-Puro 质粒 | Addgene | -- |
| Phusion 定点突变试剂盒 | ThermoFisher | F541 | |
| 文库构建 | Kapa LTP 文库制备试剂盒(Illumina 平台) | Roche | K8232 |
| RNA 提取 | Trizol 试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| Western blot | Nrf2 抗体 | Abcam | ab62352 |
| NQO1 抗体 | Cell Signaling Technology | A180 | |
| 磷酸化 S6 核糖体蛋白 (S240/244) 抗体 | Cell Signaling Technology | 2215S | |
| S6 核糖体蛋白 (54D2) 抗体 | CST | 2317 | |
| TLR4 抗体 | Abcam | ab13556 | |
| β-Actin 抗体 | Santa Cruz | 47778 | |
| qRT-PCR | High-Capacity cDNA 逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | 4368813 |
| PowerUp™ SYBR™ Green 预混液 | Applied Biosystems | A25742 | |
| 转染 | Lipofectamine 3000 转染试剂 | ThermoFisher | L3000015 |
| 荧光素酶报告基因 | ARE 报告基因试剂盒 | BPS bioscience | 60514 |
| ROS 检测 | 2',7'-二氯荧光黄双乙酸盐 | Invitrogen | C6827 |
| 流式细胞术 | LSRFortessa™ X-20 细胞分析仪 | BD | -- |
| LSR II 流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 动物实验 | IC-250 X 射线辐照仪 | Kimtron Inc. | -- |
| CB-839 | Calithera Biosciences | -- | |
| 流式细胞术 | 抗小鼠 CD16/CD32 抗体 | BioLegend | 101319 |
| CD45 (30-F11) 抗体 | BioLegend | 103147 | |
| CD4 (RM4–5) 抗体 | BioLegend | 100512 | |
| CD8 (53–6.7) 抗体 | BioLegend | 100712 | |
| CD11b (M1/70) 抗体 | BioLegend | 101206 | |
| CD11c (N418) 抗体 | BioLegend | 117333 | |
| F4/80 (BM8) 抗体 | BioLegend | 123131 | |
| Ly6G (1A8) 抗体 | BioLegend | 127607 | |
| Ly6C (HK1.4) 抗体 | BioLegend | 128041 | |
| CD206 (MMR) 抗体 | BioLegend | 141720 | |
| MHC II 类 (M5/114.15.2) 抗体 | eBioscience | 25-5321-82 | |
| 细胞处理 | TLR4 siRNA | Thermo | siRNA |
| 流式细胞术 | 小鼠肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-730 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者队列分析 | 患者样本量、治疗分组(SRT 与 S)、靶向测序基因数、NFE2L2 突变位点(E79) 阅读提示:Methods:Patient cohorts;Results:Figure 1 |
| 细胞培养与基因编辑 | 细胞系(SAS、FaDu、MOC1)来源与培养条件、Nfe2l2 敲除方法、回补突变体(E79Q/E79K)及筛选浓度 阅读提示:Methods:Cell culture;Results:Figure 3 |
| 体外放射敏感性检测 | 辐射剂量范围、克隆形成实验铺板密度、存活分数计算、ROS 检测方法 阅读提示:Methods:Clonogenic survival assay, Determination of ROS;Results:Figure 3F-G |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6J、NRG)、接种细胞数、放疗方案(3 Gy × 5)、CB-839 给药方案(200 mg/kg,口服,每日两次) 阅读提示:Methods:Tumor xenograft experiment;Results:Figure 4D-E, 5B-C |
| 免疫微环境分析 | 流式细胞术抗体组合、PMN-MDSC 及巨噬细胞门控策略、样本处理 阅读提示:Methods:FACS analysis;Results:Figure 4F-H, 5E-G |
| 转录组分析 | RNA-seq 处理条件(CB-839 浓度、照射剂量、时间点)、差异表达筛选标准 阅读提示:Methods:RNA sequencing and analysis;Results:Figure 6A-C |