样本获取与纯化
获取高纯度的四种胰腺细胞类型(腺泡、导管、PanIN、PDAC)用于全基因组甲基化分析。
对18例患者的手术切除标本进行激光捕获显微切割(LCM),提取DNA,并通过体细胞突变检测和EpiDISH去卷积验证纯度。
Comprehensive DNA Methylation Analysis Indicates That Pancreatic Intraepithelial Neoplasia Lesions Are Acinar-Derived and Epigenetically Primed for Carcinogenesis
研究包含多层级实验证据:激光显微切割获取四种纯化胰腺细胞进行全基因组亚硫酸氢盐测序,以bsseq和informME双重互补方法鉴定DMR,并通过GSEA、EpiDISH去卷积、体细胞突变验证等验证,体外和患者样本层面均进行了功能验证。
人胰腺腺泡细胞(正常腺泡) 人胰腺导管细胞(非肿瘤导管) 人胰腺上皮内瘤变(PanIN)病变 人胰腺导管腺癌(PDAC)病变
样本类型:四种细胞类型(腺泡、导管、PanIN、PDAC)来自18例患者的手术切除标本 DNA起始量:20–50 ng用于WGBS 测序平台:HiSeq 4000(2×151 bp)或NovaSeq 6000(2×150 bp) 亚硫酸氢盐转化率:≥98.8% DMR识别标准:小DMR(<5 kb)采用t统计量0.01/0.99分位数、CpG数≥10、平均甲基化差异≥25%;块DMR(≥5 kb)采用F统计置换检验,FWER≤0.01
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取高纯度的四种胰腺细胞类型(腺泡、导管、PanIN、PDAC)用于全基因组甲基化分析。
对18例患者的手术切除标本进行激光捕获显微切割(LCM),提取DNA,并通过体细胞突变检测和EpiDISH去卷积验证纯度。
获得全基因组DNA甲基化图谱,以比较四种细胞类型。
对提取的DNA进行WGBS文库制备和测序,使用NEBNext或Accel-NGS试剂盒,在HiSeq或NovaSeq平台测序。
评估四种细胞类型的整体甲基化差异,并初步判断PanIN的起源。
进行主成分分析(PCA)、层次聚类、平均甲基化水平(MML)和归一化甲基化熵(NME)密度图分析,以及甲基化块的分析。
识别基因水平上细胞类型间差异甲基化的区域,分析PanIN与腺泡/导管的重叠。
使用bsseq进行小DMR(<5 kb)的成对比较,使用informME计算Jensen-Shannon距离识别差异甲基化区域。
评估PanIN病变的基因表型状态,验证其是否为腺泡-导管中间状态。
对DMR相关基因进行Enrichr过度表示分析和基于排名的GSEA(fgsea),使用MSigDB和自定腺泡/导管/ADM基因集。
区分PanIN是前体病变还是终末状态,并识别与癌变相关的DMR。
通过置换检验识别PanIN特异性DMR,并筛选中间甲基化模式的DMR;同时识别neoplastic vs normal的进展DMR并进行富集分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 激光显微切割 | PEN膜玻片 | Applied Biosystems | LCM0522 |
| DNA提取 | QIAamp DNA微量试剂盒 | Qiagen | 56304 |
| DNA定量 | Qubit双链DNA高灵敏度检测 | ThermoFisher Scientific | Q32851 |
| 亚硫酸氢盐转化对照 | Lambda DNA | Promega | D1521 |
| WGBS文库制备 | NEBNext Ultra DNA文库制备试剂盒 | New England BioLabs | E7370L |
| Accel-NGS甲基化测序DNA文库制备试剂盒 | Swift Biosciences | 30024 | |
| DNA片段化 | Covaris S2聚焦超声破碎仪 | Covaris | -- |
| WGBS文库制备 | NEBNext Ultra末端修复/dA加尾模块 | New England BioLabs | 7442L |
| NEBNext Illumina多重寡核苷酸 | New England BioLabs | E7535L | |
| NEBNext Ultra连接模块 | New England BioLabs | 7445L | |
| 亚硫酸氢盐转化 | EZ DNA甲基化快速试剂盒 | Zymo Research | D5030 |
| 文库扩增 | Kapa HiFi Uracil+ PCR系统 | Kapa Biosystems | KK2801 |
| 文库纯化 | AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | A63881 |
| 亚硫酸氢盐转化 | EZ DNA甲基化金试剂盒 | Zymo Research | D5005 |
| 文库扩增 | 独特双索引引物 | Swift Bioscience | X9096-PLATE |
| 文库质量控制 | Agilent高灵敏度DNA试剂盒 | Agilent Technologies | 5067-4626 |
| 文库定量 | KAPA文库定量试剂盒 | KAPA Biosystems | KK4824 |
| 测序 | Illumina HiSeq 4000测序仪 | Illumina | -- |
| Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本获取与纯化 | 样本来源:18例患者;细胞类型:腺泡、导管、PanIN、PDAC;激光显微切割的切片厚度(5-9 μm) 阅读提示:Materials and Methods: Sample extraction and processing |
| DNA提取与定量 | DNA起始量:20-50 ng;QIAamp DNA Micro Kit提取 阅读提示:Materials and Methods: Sample extraction and processing |
| 全基因组亚硫酸氢盐测序 | 文库制备试剂盒(NEBNext或Accel-NGS);测序平台(HiSeq 4000或NovaSeq 6000);读长(2×151或2×150);亚硫酸氢盐转化率≥98.8% 阅读提示:Materials and Methods: Whole-genome bisulfite sequencing (WGBS), alignment, and quality control |
| DMR鉴定 | 小DMR阈值:t统计量0.01/0.99、CpG数≥10、甲基化差异≥25%;块DMR阈值:ns=500、h=2000、FWER≤0.01 阅读提示:Materials and Methods: Differential methylation analysis |
| 基因集富集分析 | 基因集:MSigDB C2、C5及Schlesinger等(2020)来源的自定基因集;fgsea参数:minSize=10、maxSize=1000 阅读提示:Materials and Methods: Gene set enrichment analysis (GSEA) |