分离和鉴定子宫内膜异位症间充质干细胞
从子宫内膜异位症组织中分离并鉴定间充质干细胞,为后续功能实验提供细胞模型。
从良性子宫内膜异位症手术标本中分离MSCs,通过流式细胞术验证CD73/CD90/CD105阳性、CD45/CD34/CD14/CD19阴性,并验证三系分化能力。
Endometriosis-Associated Mesenchymal Stem Cells Support Ovarian Clear Cell Carcinoma through Iron Regulation
包括体外共培养、类器官球形成、皮下及原位异种移植小鼠模型、RNA-seq、蛋白印迹、铁池检测及铁死亡诱导等功能与机制验证,证据层级充分。
TOV-21G、RMG1、OVISE卵巢透明细胞癌细胞系 患者来源的子宫内膜异位症间充质干细胞(enMSC) NSG小鼠皮下及卵巢原位移植瘤模型
CD10阴性与阳性enMSCs的分离及CD10表达阈值(<40%为低,>60%为高) 细胞共培养比例(OCCC与enMSC 1:1)及培养时间(3-5天) erastin和DHA的浓度范围(0.5-10 μmol/L)及处理时间 体内模型:2×10^5细胞注射量,erastin剂量10 mg/kg每日,治疗20天 铁螯合剂DFO浓度及铁供体FAC浓度(0.05-0.2 μmol/L)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从子宫内膜异位症组织中分离并鉴定间充质干细胞,为后续功能实验提供细胞模型。
从良性子宫内膜异位症手术标本中分离MSCs,通过流式细胞术验证CD73/CD90/CD105阳性、CD45/CD34/CD14/CD19阴性,并验证三系分化能力。
检测不同enMSC亚群对OCCC增殖、化疗耐药和球形成的影响。
将OCCC细胞与CD10low或CD10high enMSCs共培养,使用CellTrace Violet标记肿瘤细胞,计数细胞数量;加入顺铂或铁死亡诱导剂处理;进行球形成实验。
确定CD10表达是否决定enMSCs的促肿瘤或抑肿瘤功能。
通过流式分选获得CD10+和CD10− enMSC亚群,分别与OCCC共培养;利用慢病毒shRNA敲低或过表达CD10,观察对OCCC生长和化疗敏感性的影响。
鉴定CD10−与CD10+ enMSCs及其共培养OCCC细胞的转录组差异,特别是金属离子转运相关通路。
对CD10− enMSCs(8例患者)和CD10+ enMSCs(3例患者)以及共培养的TOV-21G细胞(每组4个样本)进行RNA-seq,使用DESeq2分析差异表达基因,并进行GO富集分析。
验证CD10− enMSCs中铁输出蛋白表达升高,并检测共培养后OCCC细胞内铁水平的变化。
通过Western blot检测enMSCs中HEPH、FPN1、FTH、FTL蛋白水平;使用钙黄绿素AM荧光探针测量OCCC和enMSCs中不稳定铁池(LIP)。
验证铁对OCCC生长的必要性,以及CD10− enMSCs能否通过铁供应部分逆转铁螯合剂的抑制作用。
使用递增浓度的DFO处理单独培养或与CD10−/CD10+ enMSCs共培养的OCCC细胞;用FAC处理单独培养的OCCC细胞,观察生长变化。
评估CD10− enMSCs是否增加OCCC对铁死亡诱导剂的敏感性,并验证铁死亡的发生。
使用不同浓度erastin或DHA处理单独培养或与CD10−/CD10+ enMSCs共培养的OCCC细胞,检测细胞活力;用BODIPY 581/591 C11和4-HNE染色检测脂质过氧化。
在体内验证CD10− enMSCs促进OCCC生长并增加对铁死亡诱导剂的敏感性,评估erastin的治疗效果。
将TOV-21G细胞单独或与CD10−/CD10+ enMSCs共注射到NSG小鼠皮下或卵巢囊内,监测肿瘤生长;用erastin治疗,评估肿瘤负担和生存期。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 乳腺上皮细胞基础培养基 | Lonza | -- |
| MCDB 105培养基 | -- | -- | |
| 199培养基 | -- | -- | |
| RPMI1640培养基 | -- | -- | |
| DMEM/F12培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| B27添加剂 | -- | -- | |
| 表皮生长因子 | -- | -- | |
| 氢化可的松 | -- | 50-23-7 | |
| 胰岛素 | -- | 11061-68-0 | |
| β-成纤维细胞生长因子 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 庆大霉素 | -- | 1403-66-3 | |
| 细胞分选 | 抗CD10抗体 | Thermo Fisher Scientific | 17-0106-42 |
| 细胞培养 | CellTrace Violet染料 | Invitrogen | C34571 |
| CellTrace Yellow染料 | Invitrogen | C34573 | |
| 顺铂 | -- | 15663-27-1 | |
| 药物处理 | Erastin | MedChemExpress | HY-15763 |
| 分子生物学 | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | 28106 |
| NanoDrop ND-1000分光光度计 | -- | -- | |
| SuperScript III第一链合成系统 | Invitrogen | 18080-051 | |
| SYBR Green预混液 | Applied Biosystems | 4472908 | |
| CFX96实时荧光定量PCR系统 | Bio-Rad | -- | |
| RNA测序 | NucleoSpin RNA试剂盒 | Machery-Nagel | -- |
| Illumina测序平台 | Illumina | -- | |
| 动物实验 | NSG小鼠 | The Jackson Laboratory | 005557 |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Pierce | 89900 |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23227 | |
| NuPAGE SDS凝胶 | Invitrogen | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗铁蛋白L抗体 | Abcam | ab69090 | |
| 抗铁蛋白H抗体 | Abcam | ab65080 | |
| 抗Ferroportin抗体 | Abcam | ab58695 | |
| 抗转铁蛋白受体抗体 | Abcam | ab84036 | |
| 抗HEPH抗体 | Abcam | ab108003 | |
| SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物 | Pierce | 34577 | |
| 铁池检测 | 钙黄绿素AM | Invitrogen | C1430 |
| 去铁胺 | Sigma-Aldrich | 70-51-9 | |
| 脂质氧化检测 | BODIPY 581/591 C11 | Invitrogen | -- |
| 抗4-羟基壬烯醛抗体 | Millipore | AB5605 | |
| Alexa Fluor 546二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-11056 | |
| 铁供体处理 | 柠檬酸铁铵 | MP Biomedicals | 158040 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| enMSC分离与鉴定 | 患者数量、组织来源、培养条件(MEBM培养基成分),CD10表达阈值(低<40%,高>60%),传代次数(<8-10,实验用≤5) 阅读提示:Materials and Methods: enMSCs |
| 体外共培养功能实验 | 共培养比例(1:1),肿瘤细胞数量(1×10^4),培养时间(4天),顺铂浓度(0.5,1,2 μg/mL),erastin/DHA浓度范围(0.5-10 μmol/L) 阅读提示:Materials and Methods: Proliferation, chemoresistance, and ferroptosis induction assays |
| 球形成实验 | 细胞接种数量(1×10^3 OCCC细胞/孔或与enMSC各0.5×10^3),培养时间(7天),定义球体(>4细胞) 阅读提示:Materials and Methods: Sphere formation assay |
| RNA-seq | 样本数量(CD10- enMSC n=8,CD10+ enMSC n=3,共培养TC每组n=4),差异表达阈值(Padj ≤0.05, |log2FC|≥1),参考基因组hg38 阅读提示:Materials and Methods: RNA sequencing |
| 铁蛋白表达检测 | 抗体稀释比例(1:1000,HEPH 1:500),细胞裂解和蛋白定量方法 阅读提示:Materials and Methods: Immunoblotting |
| LIP检测 | 细胞数量(1×10^5 OCCC),CA-AM浓度(0.125 μmol/L),DFO浓度(100 mmol/L),孵育时间 阅读提示:Materials and Methods: Labile iron pool assay |
| 铁螯合和铁供体实验 | DFO浓度(递增),FAC浓度(0-0.2 μmol/L),培养时间(4天) 阅读提示:Materials and Methods: Ferric ammonium citrate treatment |
| 铁死亡检测 | erastin浓度(1 μmol/L),BODIPY浓度(1.5 mmol/L 储液,孵育20分钟),4-HNE染色条件 阅读提示:Materials and Methods: BODIPY assay, 4-Hydroxynonenal staining |
| 体内动物实验 | 小鼠品系(NSG),年龄(6-8周),细胞注射量(2×10^5),注射部位(皮下或卵巢囊),erastin剂量(10 mg/kg/天),治疗时间(20天),终点标准 阅读提示:Materials and Methods: Mouse models |
| 统计分析方法 | 统计检验方法(Student t test, ANOVA, log-rank),数据表示(mean±SEM),重复次数(至少3次) 阅读提示:Materials and Methods: Statistical analysis |