建立AR高表达的膀胱癌细胞模型
获得AR表达稳定且均一的细胞系,用于后续分子机制研究
对UMUC3细胞进行单细胞克隆,筛选AR高表达克隆UMUC3-c31,并在炭剥离血清条件下培养以增强AR表达。
Androgen Receptor Regulates CD44 Expression in Bladder Cancer
包含体外细胞模型、AR ChIP-seq、转录组分析、体内功能基因组筛选、CRISPR验证及患者样本分析,具有多层级验证。
UMUC3-c31人膀胱癌细胞系 小鼠异种移植模型 膀胱癌患者组织样本 TCGA膀胱癌数据集
UMUC3-c31细胞在无酚红培养基+炭剥离血清中培养24小时以上以去除内源性雄激素 R1881刺激浓度为10nM,处理24小时 体内实验中每组小鼠数量(如shRNA筛选:完整组9只,去势组7只) CRISPR文库包含121个ChIP峰gRNA、10个非靶向对照和10个CD44编码序列靶向gRNA 患者TMA免疫组化评估AR和CD44表达,评分0-3
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得AR表达稳定且均一的细胞系,用于后续分子机制研究
对UMUC3细胞进行单细胞克隆,筛选AR高表达克隆UMUC3-c31,并在炭剥离血清条件下培养以增强AR表达。
鉴定AR在全基因组上的结合位点,了解AR调控网络
UMUC3-c31细胞经R1881或对照处理,进行AR ChIP-seq,鉴定AR结合峰及富集元件。
检测AR激活引起的基因表达变化,筛选候选靶基因
UMUC3-c31细胞经R1881或对照处理,提取RNA进行微阵列分析,鉴定差异表达基因。
在动物模型中验证AR调控的候选基因的功能相关性
构建ORF和shRNA混合文库,转导UMUC3-c31细胞后皮下注射到完整或去势雄性小鼠,通过肿瘤生长和NGS分析筛选功能相关基因。
验证CD44相关ARE是否介导AR对CD44转录的调控
设计CRISPR gRNA库靶向CD44潜在ARE,转导细胞,R1881处理后FACS分选CD44高低群体,NGS分析gRNA富集;随后用单gRNA克隆验证。
检验AR与CD44表达在膀胱癌患者中的相关性
分析TCGA数据、新辅助化疗数据集及组织芯片免疫组化染色,评估AR和CD44表达关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Invitrogen | -- |
| MEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 炭剥离血清 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 药物处理 | R1881 | Perkin Elmer | -- |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| VICRYL缝线 | VWR | -- | |
| 自动缝合夹 | Braintree Scientific | -- | |
| 细胞增殖 | 阿尔玛蓝 | -- | -- |
| BioTek Synergy H1酶标仪 | BioTek | -- | |
| ChIP-seq | Diagenode Bioruptor超声波破碎仪 | Diagenode | -- |
| 蛋白A/G PLUS-琼脂糖珠 | Santa Cruz Biotechnology | -- | |
| 蛋白酶K | Qiagen | -- | |
| 核糖核酸酶A | Qiagen | -- | |
| QIAquick PCR纯化试剂盒 | Qiagen | -- | |
| 琼脂糖 | -- | -- | |
| 溴化乙锭 | -- | -- | |
| Bio-Rad Chemidoc MP成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 微阵列 | PrimeView人类基因表达芯片 | ThermoFisher Scientific | -- |
| RNA提取 | RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | ThermoScientific | -- |
| Tris-甘氨酸蛋白凝胶 | Invitrogen | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| SuperSignal West Pico Plus化学发光底物 | Thermo Scientific | -- | |
| RT-qPCR | iScript cDNA合成试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| iTaq SYBR green预混液 | Bio-Rad | -- | |
| QuantStudio6实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| siRNA转染 | Lipofectamine RNAiMax转染试剂 | -- | -- |
| ORF文库构建 | Qiagen Plasmid Plus Maxi质粒提取试剂盒 | Qiagen | -- |
| shRNA筛选 | Gentra Puregene DNA提取试剂盒 | Qiagen | -- |
| CRISPR筛选 | CD44-PE抗体 | Biolegend | -- |
| FACS分选 | MoFlo XDP100流式细胞分选仪 | Beckman Coulter | -- |
| 测序 | HiSeq4000测序仪 | Illumina | -- |
| 免疫组化 | CD44抗体(克隆E7K2Y) | Cell Signaling Technology | 37259 |
| AR抗体(克隆D6F11) | Cell Signaling Technology | 5153 | |
| Western blot | AR抗体(D6F11) | Cell Signaling Technology | -- |
| β-肌动蛋白抗体(13E5) | Cell Signaling Technology | -- | |
| CD44抗体(156-3C11) | Cell Signaling Technology | -- | |
| 兔源IgG二抗,HRP标记 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 鼠源IgG二抗,HRP标记 | Cell Signaling Technology | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与激素剥夺 | UMUC3-c31细胞在无酚红培养基+10%炭剥离血清(CSS)中至少培养24小时;培养基需含丙酮酸钠,细胞在37°C、5%CO2下培养。 阅读提示:见Materials and Methods: Cell Lines |
| AR ChIP-seq | R1881处理浓度10nM,处理时间24小时;对照为乙醇;细胞固定用1%甲醛;染色质剪切使用Bioruptor;抗体为SC-816X。 阅读提示:见Materials and Methods: ChIP-Seq及Figure 1 |
| 转录组微阵列分析 | R1881处理10nM 24小时;RNA提取用RNeasy kit;微阵列平台为PrimeView Human Gene Expression Arrays;差异表达阈值为FDR<0.05。 阅读提示:见Materials and Methods: Microarray及Figure 2 |
| 体内功能基因组筛选 | 小鼠为8-10周龄雄性裸鼠;去势手术方法;ORF筛选每组小鼠数量(完整n=6,去势n=4);shRNA筛选每组数量(完整n=9,去势n=7);细胞注射量1x10^6;肿瘤测量及终点标准。 阅读提示:见Materials and Methods: Animals, Castration, shRNA Functional Genomic Screen及Figure 4 |
| CRISPR筛选 | gRNA文库组成(131 oligos:121 ChIP峰、10 NTC、10 CD44-CDS);转导后96小时加puromycin;R1881处理10nM;FACS分选CD44low/high;测序平台HiSeq4000。 阅读提示:见Materials and Methods: CRISPR targeted screen of proposed AREs及Figure 5 |
| 临床样本分析 | TCGA数据集(Firehose Legacy)中AR和CD44 mRNA表达数据;新辅助化疗数据集(n=115);TMA免疫组化染色,AR和CD44评分0-3。 阅读提示:见Materials and Methods: Immunohistochemistry及Figure 7 |