FGFR驱动的尿路上皮癌对选择性FGFR抑制剂的耐药性

Resistance to Selective FGFR Inhibitors in FGFR-Driven Urothelial Cancer

作者信息Francesco Facchinetti, Antoine Hollebecque, Floriane Braye, Damien Vasseur, Yoann Pradat, Rastislav Bahleda, Cédric Pobel, Ludovic Bigot, Olivier Déas, Juan David Florez Arango, Giorgia Guaitoli, Hayato Mizuta, David Combarel, Lambros Tselikas, Stefan Michiels, Sergey I Nikolaev, Jean-Yves Scoazec, Santiago Ponce-Aix, Benjamin Besse, Ken A Olaussen, Yohann Loriot, Luc Friboulet
PMID37377403
发布时间2023-09-06
DOI10.1158/2159-8290.CD-22-1441

实验完整度

包含患者样本的分子分析、Ba/F3细胞功能验证、患者来源异种移植模型及体内药理实验,涉及基因突变与信号通路机制验证。

主要模型

Ba/F3细胞 患者来源异种移植(PDX)模型 患者来源细胞系(MR15) 患者肿瘤组织及ctDNA样本

重点核对

FGFR激酶域突变谱(N540K、V553L/M、V555L/M、L608V等)对FGFR抑制剂敏感性的影响 PI3K–mTOR通路改变(PIK3CA、TSC1/2、NF2、PTEN)在耐药中的作用 EGFR激活介导的旁路耐药机制 erdafitinib与pictilisib或gefitinib联合的协同效应

摘要

几种成纤维细胞生长因子受体(FGFR)抑制剂已被批准或正在临床开发中,用于治疗FGFR驱动的尿路上皮癌,而导致患者复发的耐药分子机制尚未完全探索。我们确定了21例接受选择性FGFR抑制剂治疗的FGFR驱动尿路上皮癌患者,并分析了进展后组织和/或循环肿瘤DNA(ctDNA)。我们在7例(33%)患者中检测到FGFR酪氨酸激酶结构域的单突变(FGFR3 N540K、V553L/M、V555L/M、E587Q;FGFR2 L551F),在1例(5%)病例中检测到多个突变(FGFR3 N540K、V555L和L608V)。使用Ba/F3细胞,我们确定了它们对多种选择性FGFR抑制剂的耐药/敏感谱。11例(52%)患者携带PI3K–mTOR通路改变(n = 4 TSC1/2,n = 4 PIK3CA,n = 1 TSC1和PIK3CA,n = 1 NF2,n = 1 PTEN)。在患者来源模型中,erdafitinib与pictilisib在存在PIK3CA E545K时具有协同作用,而erdafitinib–gefitinib联合能够克服由EGFR激活介导的旁路耐药。意义:在迄今为止关于该主题的最大规模研究中,我们检测到FGFR激酶结构域突变在尿路上皮癌中对FGFR抑制剂耐药的高频率。靶外耐药机制主要涉及PI3K–mTOR通路。我们的发现为克服旁路耐药的联合治疗策略提供了临床前证据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
FGFR驱动的尿路上皮癌对选择性FGFR抑制剂耐药的分子机制是什么?
核心机制
FGFR激酶域突变(如N540K、V555L等)导致药物结合受阻,PI3K–mTOR通路激活或EGFR旁路激活介导靶外耐药。
主要证据
在患者样本中检测到FGFR激酶域突变和PI3K–mTOR通路改变;Ba/F3细胞实验显示突变导致IC50升高;PDX模型证实联合治疗(erdafitinib+pictilisib或gefitinib)可克服耐药。
研究意义
该研究为克服FGFR抑制剂耐药提供了临床前证据,支持联合治疗策略的开发。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者队列与样本分析

识别FGFR驱动尿路上皮癌患者对FGFR抑制剂耐药的分子特征。

收集56例晚期尿路上皮癌患者的临床和分子数据,对21例接受FGFR抑制剂治疗的患者进行进展后组织和/或ctDNA测序。

2

FGFR激酶域突变功能验证

评估FGFR3/2激酶域突变对FGFR抑制剂敏感性的影响。

在Ba/F3细胞中构建FGFR3::TACC3和FGFR2::BICC1融合蛋白的野生型或突变型,暴露于8种FGFR抑制剂,测定IC50并进行免疫印迹分析。

3

PI3K–mTOR通路改变分析

确定PI3K–mTOR通路改变在耐药中的作用。

在患者肿瘤样本和ctDNA中检测PI3K–mTOR通路相关基因突变,并在PDX模型中验证PI3K抑制的协同作用。

4

旁路耐药机制验证

验证EGFR激活介导的非突变耐药机制。

患者MR15的PDX和细胞系中检测EGFR高磷酸化,并在体内外验证erdafitinib与gefitinib联合的效果。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
NOD/SCID gamma (NSG) 小鼠Charles River Laboratories--
Ba/F3细胞DSMZACC 300
DMEM培养基----
胎牛血清----
白细胞介素-3----
杀稻瘟菌素----
肝素Sigma-AldrichH3149
酸性成纤维细胞生长因子R&D Systems232-FA-025/CF
厄达替尼Selleck Chemicals--
英菲替尼Selleck Chemicals--
培米替尼Selleck Chemicals--
福替替尼Selleck Chemicals--
德扎替尼Selleck Chemicals--
AZD4547Selleck Chemicals--
佐利替尼Selleck Chemicals--
罗加替尼MedChemExpress--
吉非替尼----
匹克替尼----
pLenti6/V5定向TOPO克隆试剂盒Thermo Fisher ScientificK495510
QuickChange XL定点突变试剂盒Agilent200516
pCR2.1-TOPO载体Invitrogen--
肿瘤解离试剂盒Miltenyi Biotec130-095-929
gentleMACS解离器Miltenyi Biotec--
Y-27632SelleckchemS1049
CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒PromegaG7570
FGFR3抗体Abcamab133644
pEGFR抗体Abcamab5644
EGFR抗体Santa Cruz Biotechnologysc-03
β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA1978
磷酸化FGFR抗体Cell Signaling Technology3471S
磷酸化AKT抗体Cell Signaling Technology4060S
AKT抗体Cell Signaling Technology4691S
磷酸化ERK抗体Cell Signaling Technology9101S
ERK抗体Cell Signaling Technology9102S
磷酸化S6抗体Cell Signaling Technology4858S
S6抗体Cell Signaling Technology2217S
BIM抗体Cell Signaling Technology2933S
0.5%甲基纤维素----
0.5%吐温80----
10%羟丙基β-环糊精----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者队列与样本分析
患者纳入标准:晚期尿路上皮癌、接受FGFR抑制剂治疗、有进展后组织或ctDNA样本;测序平台及覆盖度(WES平均覆盖140×)
阅读提示:Methods: Patients and Treatments; Molecular Analyses
FGFR激酶域突变功能验证
Ba/F3细胞构建条件(FGFR3::TACC3或FGFR2::BICC1,突变类型);抑制剂处理浓度和时间;IC50测定方法
阅读提示:Methods: Cell Viability Assays and Immunoblots; Figure 4
PI3K–mTOR通路分析
检测的突变基因(PIK3CA、TSC1/2等);样本类型(组织或ctDNA);PDX模型中药物剂量和给药方案
阅读提示:Results: Molecular Alterations in the PI3K–mTOR Pathway; Methods: Development of PDXs in Mice
旁路耐药机制验证
MR15患者来源细胞系和PDX的建立方法;EGFR激活检测(磷酸化RTK阵列);联合用药剂量和给药方式
阅读提示:Results: Nonmutational Resistance Mechanism Identified Using Patient-Derived Models; Methods: Cell Lines