患者队列与样本分析
识别FGFR驱动尿路上皮癌患者对FGFR抑制剂耐药的分子特征。
收集56例晚期尿路上皮癌患者的临床和分子数据,对21例接受FGFR抑制剂治疗的患者进行进展后组织和/或ctDNA测序。
Resistance to Selective FGFR Inhibitors in FGFR-Driven Urothelial Cancer
包含患者样本的分子分析、Ba/F3细胞功能验证、患者来源异种移植模型及体内药理实验,涉及基因突变与信号通路机制验证。
Ba/F3细胞 患者来源异种移植(PDX)模型 患者来源细胞系(MR15) 患者肿瘤组织及ctDNA样本
FGFR激酶域突变谱(N540K、V553L/M、V555L/M、L608V等)对FGFR抑制剂敏感性的影响 PI3K–mTOR通路改变(PIK3CA、TSC1/2、NF2、PTEN)在耐药中的作用 EGFR激活介导的旁路耐药机制 erdafitinib与pictilisib或gefitinib联合的协同效应
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
识别FGFR驱动尿路上皮癌患者对FGFR抑制剂耐药的分子特征。
收集56例晚期尿路上皮癌患者的临床和分子数据,对21例接受FGFR抑制剂治疗的患者进行进展后组织和/或ctDNA测序。
评估FGFR3/2激酶域突变对FGFR抑制剂敏感性的影响。
在Ba/F3细胞中构建FGFR3::TACC3和FGFR2::BICC1融合蛋白的野生型或突变型,暴露于8种FGFR抑制剂,测定IC50并进行免疫印迹分析。
确定PI3K–mTOR通路改变在耐药中的作用。
在患者肿瘤样本和ctDNA中检测PI3K–mTOR通路相关基因突变,并在PDX模型中验证PI3K抑制的协同作用。
验证EGFR激活介导的非突变耐药机制。
患者MR15的PDX和细胞系中检测EGFR高磷酸化,并在体内外验证erdafitinib与gefitinib联合的效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | NOD/SCID gamma (NSG) 小鼠 | Charles River Laboratories | -- |
| 细胞培养 | Ba/F3细胞 | DSMZ | ACC 300 |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 白细胞介素-3 | -- | -- | |
| 杀稻瘟菌素 | -- | -- | |
| 肝素 | Sigma-Aldrich | H3149 | |
| 酸性成纤维细胞生长因子 | R&D Systems | 232-FA-025/CF | |
| 药物处理 | 厄达替尼 | Selleck Chemicals | -- |
| 英菲替尼 | Selleck Chemicals | -- | |
| 培米替尼 | Selleck Chemicals | -- | |
| 福替替尼 | Selleck Chemicals | -- | |
| 德扎替尼 | Selleck Chemicals | -- | |
| AZD4547 | Selleck Chemicals | -- | |
| 佐利替尼 | Selleck Chemicals | -- | |
| 罗加替尼 | MedChemExpress | -- | |
| 吉非替尼 | -- | -- | |
| 匹克替尼 | -- | -- | |
| 载体构建 | pLenti6/V5定向TOPO克隆试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K495510 |
| QuickChange XL定点突变试剂盒 | Agilent | 200516 | |
| 分子克隆 | pCR2.1-TOPO载体 | Invitrogen | -- |
| 患者来源细胞系建立 | 肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-095-929 |
| gentleMACS解离器 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 患者来源细胞系培养 | Y-27632 | Selleckchem | S1049 |
| 细胞活力测定 | CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒 | Promega | G7570 |
| 免疫印迹 | FGFR3抗体 | Abcam | ab133644 |
| pEGFR抗体 | Abcam | ab5644 | |
| EGFR抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-03 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A1978 | |
| 磷酸化FGFR抗体 | Cell Signaling Technology | 3471S | |
| 磷酸化AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4060S | |
| AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4691S | |
| 磷酸化ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 9101S | |
| ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 9102S | |
| 磷酸化S6抗体 | Cell Signaling Technology | 4858S | |
| S6抗体 | Cell Signaling Technology | 2217S | |
| BIM抗体 | Cell Signaling Technology | 2933S | |
| 动物实验 | 0.5%甲基纤维素 | -- | -- |
| 0.5%吐温80 | -- | -- | |
| 10%羟丙基β-环糊精 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者队列与样本分析 | 患者纳入标准:晚期尿路上皮癌、接受FGFR抑制剂治疗、有进展后组织或ctDNA样本;测序平台及覆盖度(WES平均覆盖140×) 阅读提示:Methods: Patients and Treatments; Molecular Analyses |
| FGFR激酶域突变功能验证 | Ba/F3细胞构建条件(FGFR3::TACC3或FGFR2::BICC1,突变类型);抑制剂处理浓度和时间;IC50测定方法 阅读提示:Methods: Cell Viability Assays and Immunoblots; Figure 4 |
| PI3K–mTOR通路分析 | 检测的突变基因(PIK3CA、TSC1/2等);样本类型(组织或ctDNA);PDX模型中药物剂量和给药方案 阅读提示:Results: Molecular Alterations in the PI3K–mTOR Pathway; Methods: Development of PDXs in Mice |
| 旁路耐药机制验证 | MR15患者来源细胞系和PDX的建立方法;EGFR激活检测(磷酸化RTK阵列);联合用药剂量和给药方式 阅读提示:Results: Nonmutational Resistance Mechanism Identified Using Patient-Derived Models; Methods: Cell Lines |