临床样本相关性分析
探究人滑膜巨噬细胞中PSTPIP2水平与RA疾病活动度的关系,以及是否与巨噬细胞极化有关。
收集23例RA患者和5例急性创伤患者的外周血和滑膜组织,通过流式分选获得CD11b+细胞,RT-qPCR检测PSTPIP2表达;免疫组化和免疫荧光染色观察滑膜组织;流式细胞术检测CD206+和CD86+细胞比例;线性回归分析PSTPIP2水平与DAS28、CD206+细胞频率的相关性。
PSTPIP2 regulates synovial macrophages polarization and dynamics via ERβ in the joint microenvironment
包含临床样本分析(RA患者外周血和滑膜)、CIA小鼠模型、基因报告小鼠、条件性基因敲除小鼠、AAV介导的体内过表达、体外BMDM极化实验、影像学和组织学评估及细胞动力学分析,多个证据层级且包含功能验证和机制验证。
类风湿关节炎患者外周血和滑膜组织 DBA/1小鼠胶原诱导关节炎(CIA)模型 Pstpip2CreR26-ZsGreen报告小鼠 Esr2fl/fl/Adgre-Cre小鼠(F4/80+细胞特异性ERβ敲除)
RA患者与急性创伤患者的纳入/排除标准及临床特征匹配(如年龄、BMI、用药等) CIA模型免疫方案:0.1 ml完全弗氏佐剂(含4 mg/ml BCG和2 mg/ml鸡II型胶原),第0天初次免疫,第21天加强免疫 AAV-PSTPIP2(AAV5)关节腔注射:第22天注射,第42天取材,感染效率>80%,PSTPIP2过表达>3倍(RT-qPCR验证) Esr2fl/fl/Adgre-Cre小鼠:F4/80+细胞特异性Esr2基因敲除,用于验证ERβ依赖性 ERβ拮抗剂Prinaberel(MedChemExpress, Cat. HY-14933)体外处理BMDMs,浓度未明确说明
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究人滑膜巨噬细胞中PSTPIP2水平与RA疾病活动度的关系,以及是否与巨噬细胞极化有关。
收集23例RA患者和5例急性创伤患者的外周血和滑膜组织,通过流式分选获得CD11b+细胞,RT-qPCR检测PSTPIP2表达;免疫组化和免疫荧光染色观察滑膜组织;流式细胞术检测CD206+和CD86+细胞比例;线性回归分析PSTPIP2水平与DAS28、CD206+细胞频率的相关性。
利用报告小鼠观察PSTPIP2在CIA过程中的时空分布,以及PSTPIP2hi滑膜巨噬细胞是否形成免疫屏障。
使用Pstpip2CreR26-ZsGreen报告小鼠、野生型小鼠和正常对照(各10只)建立CIA模型,在炎症高峰(day35)和缓解期(day70)取材,通过免疫荧光染色和流式细胞术观察PSTPIP2的表达位置、与F4/80和CD206的共定位,以及紧密连接蛋白Claudin5和ZO-1的表达。
验证PSTPIP2在CIA小鼠中的抗炎和抗骨侵蚀作用,以及对滑膜巨噬细胞极化的影响。
DBA/1小鼠建立CIA模型,于第22天关节腔注射AAV-PSTPIP2或AAV-empty(或生理盐水),第42天取材。评估关节炎评分、骨侵蚀(micro-CT和组织学染色)、滑膜巨噬细胞极化(流式检测F4/80+CD206+和F4/80+CD86+比例),并通过RT-qPCR验证PSTPIP2过表达效率。
明确PSTPIP2调节滑膜巨噬细胞极化是否依赖ERβ,并验证ERβ在PSTPIP2抗侵蚀功能中的作用。
体外BMDM极化实验中,使用ERα拮抗剂AZD9496、ERβ拮抗剂Prinaberel、GPER拮抗剂Estriol处理,观察对PSTPIP2介导的M2极化的影响。体内使用Esr2fl/fl(对照)和Esr2fl/fl/Adgre-Cre(F4/80+细胞特异性ERβ敲除)小鼠,均诱导CIA并AAV-PSTPIP2过表达,比较骨侵蚀、滑膜PSTPIP2分布和极化标志物。
检验PSTPIP2是否通过调节肌动蛋白和丝状伪足影响巨噬细胞迁移,以及是否依赖ERβ。
从不同基因型小鼠分离滑膜巨噬细胞,进行活细胞延时摄像和扫描电镜,分析丝状伪足形成速率、长度和膜皱褶程度,并观察Actin与PSTPIP2共定位。在Esr2fl/fl和Esr2fl/fl/Adgre-Cre小鼠中比较PSTPIP2过表达的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 体外细胞实验(巨噬细胞极化) | AZD9496 | MedChemExpress | HY-12870 |
| Prinaberel | MedChemExpress | HY-14933 | |
| 雌三醇 | MedChemExpress | HY-B0412 | |
| 流式分析(人外周血/滑膜细胞) | 人CD11b APC抗体 | BD Pharmingen | 553312 |
| 人CD86 FITC抗体 | BD Pharmingen | 560958 | |
| 人CD206 PE抗体 | BD Pharmingen | 555954 | |
| 流式分析(小鼠滑膜细胞) | 小鼠F4/80 PE抗体 | BD Pharmingen | 565410 |
| 小鼠CD86 FITC抗体 | BD Pharmingen | 561962 | |
| 小鼠CD206 Alexa抗体 | BD Pharmingen | 565250 | |
| 免疫组化/免疫荧光 | 抗PSTPIP2抗体 | abcam | ab155543 |
| 免疫荧光 | 抗Claudin5抗体 | abcam | ab131259 |
| 抗ZO-1抗体 | abcam | ab190085 | |
| 羊抗鼠IgG H&L Alexa荧光二抗 | abcam | ab150113 | |
| 羊抗鼠IgG H&L FITC荧光二抗 | abcam | ab6758 | |
| 抗CD11b抗体 | abcam | ab52478 | |
| 抗F4/80抗体 | abcam | ab300421 | |
| 免疫组化/免疫荧光对照 | 兔IgG单克隆同型对照 | abcam | ab172730 |
| 流式分选 | 小鼠抗F4/80超纯磁珠 | Miltenyi | 130-110-443 |
| MiniMACS起始试剂盒 | Miltenyi | 130-090-312 | |
| MS分离柱 | Miltenyi | 130-042-201 | |
| 细胞培养与延时摄像(肌动蛋白染色) | 小鼠抗肌动蛋白抗体 | abcam | ab11003 |
| 延时摄像(二抗) | 羊抗鼠IgG(H+L) FITC标记二抗 | Elabscience | E-AB-1015 |
| 羊抗兔IgG(H+L) AF647标记二抗 | Elabscience | E-AB-1075 | |
| micro-CT扫描 | 布鲁克SkyScan 1276显微CT | Bruker | -- |
| 扫描电镜 | JEOL JSM6400扫描电子显微镜 | JEOL | -- |
| 激光共聚焦显微镜 | 奥林巴斯激光共聚焦显微镜(FV3000) | Olympus | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism(版本8.01) | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本分析 | RA患者和创伤患者的纳入排除标准、样本量(23例RA、5例创伤)、滑膜组织来源(5例进展性RA和5例创伤) 阅读提示:Methods: Human samples; Figure 1 legend |
| CIA模型诱导 | 小鼠品系和性别(DBA/1JGpt雌性,5-8周龄)、免疫方案(第0天和第21天,0.1 ml完全弗氏佐剂,含4 mg/ml BCG和2 mg/ml鸡II型胶原) 阅读提示:Methods: Induction of collagen-induced arthritis |
| AAV-PSTPIP2过表达 | AAV血清型(AAV5)、注射时间(第22天)、注射体积(文中未明确说明)、剂量(文中未明确说明) 阅读提示:Methods: Construction of adeno-associated virus; Results: PSTPIP2 regulates synovial macrophages polarization in vivo |
| 巨噬细胞极化实验 | BMDM分化条件(M-CSF浓度、时间)、M1/M2极化刺激(IFN-γ+LPS浓度、IL-4浓度)、ER拮抗剂浓度(AZD9496、Prinaberel、Estriol浓度未明确) 阅读提示:Methods: Culture of bone marrow-derived mononuclear cells; Figure 4 legend |
| ERβ条件敲除小鼠模型 | Esr2fl/fl/Adgre-Cre小鼠的构建、基因敲除验证方法、CIA诱导及AAV注射时间(day22)、取材时间(day42) 阅读提示:Methods: Mice; Results: The ability of PSTPIP2 to regulate synovial macrophages polarization is dependent on ERβ |