基于自喂养三维培养的毛乳头细胞来源细胞外囊泡通过Krüppel样因子4/血管内皮生长因子A驱动的血管生成促进伤口愈合

Extracellular vesicles from 3D cultured dermal papilla cells improve wound healing via Krüppel-like factor 4/vascular endothelial growth factor A -driven angiogenesis

作者信息Yunwei Wang, Kuo Shen, Yulin Sun, Peng Cao, Jia Zhang, Wanfu Zhang, Yang Liu, Hao Zhang, Yang Chen, Shaohui Li, Chaolei Xu, Chao Han, Yating Qiao, Qingyi Zhang, Bin Wang, Liang Luo, Yunshu Yang, Hao Guan
PMID37908562
发布时间2023-10-30
DOI10.1093/burnst/tkad034

实验完整度

高

包含体外细胞实验(增殖、迁移、管形成)和体内小鼠全层皮肤缺损模型,并通过RNA-seq、qRT-PCR、Western blot、双荧光素酶报告实验验证KLF4/VEGFA机制。

主要模型

3D培养毛乳头细胞球体(tdDPCs) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) C57BL/6小鼠全层皮肤缺损模型

重点核对

比较DPC-EVs和tdDPC-EVs对HUVEC增殖、迁移和成管能力的影响(10 μg/ml处理) 体内小鼠模型:6周龄C57BL/6小鼠,每只背部制作两个5 mm直径全层皮肤缺损,分为PBS、DPC-EVs、tdDPC-EVs三组,每组n=10,于术后0-2天皮下注射50 μg/100 μl EVs或PBS 机制验证:KLF4敲低(shKLF4)和过表达逆转实验,检测VEGFA表达及功能 双荧光素酶报告实验验证KLF4直接结合VEGFA启动子 RNA-seq筛选差异基因,关注KLF4和VEGFA

摘要

背景:难以愈合的伤口是临床上重要的难题。已有证据表明,毛乳头细胞(DPCs)可能通过分泌细胞外囊泡(EVs)来调节伤口愈合过程。然而,低分离效率和受限的细胞活性阻碍了DPC-EVs在伤口愈合中的应用。本研究旨在基于自喂养三维(3D)培养开发新型3D-DPC球体(tdDPCs),并评估tdDPC-EVs在刺激血管生成和皮肤伤口愈合中的作用。方法:为解决当前DPC-EVs的局限性,我们先前开发了一种自喂养3D培养方法构建tdDPCs。通过免疫荧光染色和流式细胞术鉴定DPCs和tdDPCs。随后,我们从细胞中提取EVs,并通过免疫荧光染色、划痕实验和Transwell实验比较DPC-EVs和tdDPC-EVs对人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的体外作用。同时,我们建立了小鼠全层皮肤损伤模型,并使用激光多普勒以及苏木精-伊红(H&E)、Masson、CD31和α-SMA染色评估了DPC-EVs和tdDPC-EVs对体内伤口愈合效率的影响。为阐明潜在机制,我们对tdDPC-EVs和磷酸盐缓冲液(PBS)处理的HUVECs进行了RNA测序(RNA-seq)。为验证RNA-seq数据,我们构建了Krüppel样因子4(KLF4)的敲低和过表达载体。通过Western blotting、划痕实验、Transwell实验和管形成实验检测了KLF4和血管内皮生长因子A(VEGFA)在KLF4敲低或过表达后tdDPC-EVs处理的HUVECs中的蛋白表达、细胞迁移和管腔形成能力。进行了双荧光素酶报告基因实验以验证KLF4对VEGFA的激活作用。结果:我们成功培养了tdDPCs并从DPCs和tdDPCs中提取了EVs。tdDPC-EVs显著促进HUVECs的增殖、管腔形成和迁移。与DPC-EVs不同,tdDPC-EVs在促进血管生成、加速伤口愈合和提高伤口愈合效率方面在体外和体内均显示出显著优势。生物信息学分析和进一步的功能实验证实,tdDPC-EVs调控的KLF4/VEGFA轴在加速伤口愈合中起关键作用。结论:3D培养可作为创新优化策略,有效开发用于治疗皮肤伤口的DPC来源EVs。tdDPC-EVs通过KLF4/VEGFA驱动的血管生成显著促进伤口愈合。关键词:细胞外囊泡,毛乳头细胞,3D球体,伤口愈合,血管生成。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
本研究旨在开发基于自喂养3D培养的新型三维毛乳头细胞球体(tdDPCs),并评估其来源的细胞外囊泡(tdDPC-EVs)能否通过促进血管生成来加速皮肤伤口愈合。
核心机制
tdDPC-EVs通过上调KLF4表达,进而直接转录激活VEGFA,驱动血管生成,从而促进伤口愈合。
主要证据
体外实验显示tdDPC-EVs促进HUVEC增殖、迁移和成管;体内小鼠全层皮肤缺损模型显示tdDPC-EVs加速伤口愈合、改善血流灌注和血管成熟;RNA-seq、qRT-PCR、Western blot、敲低/过表达及双荧光素酶报告实验证实KLF4/VEGFA轴的关键作用。
研究意义
3D培养可作为创新优化策略开发DPC来源EVs用于皮肤伤口治疗,tdDPC-EVs通过KLF4/VEGFA驱动的血管生成显著提高伤口愈合速度和质量。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建tdDPC球体并提取EVs

建立一种新的3D培养方法(SLF-3D)培养毛乳头细胞,获得高产量、高生物活性的细胞外囊泡。

从C57BL/6小鼠触须垫分离原代DPCs,经传统2D培养至第5代后,接种于含生长因子的3D培养基中进行自喂养3D培养,形成半悬浮球体(tdDPCs)。随后通过差速超速离心从培养上清中提取DPC-EVs和tdDPC-EVs。

2

鉴定DPCs和tdDPCs

验证tdDPCs保留毛乳头细胞特征及干细胞特性。

通过免疫荧光染色检测ALP和LEF1表达,通过流式细胞术检测CD29、CD34、CD44、CD90、CD105和CD45等表面标记。

3

表征EVs(形态、大小、标志物)

确认提取的EVs具有典型特征,并比较DPC-EVs和tdDPC-EVs的物理性质。

使用透射电子显微镜观察形态,Western blot检测EV标志物(TSG101、CD81、CD9、calnexin),NanoFCM分析粒径和浓度。

4

评估EVs对HUVEC增殖的影响

验证tdDPC-EVs比DPC-EVs更能促进内皮细胞增殖。

将HUVEC与PBS、DPC-EVs或tdDPC-EVs(10 μg/ml)共培养,通过CCK-8实验和Ki67免疫荧光染色检测细胞增殖。

5

评估EVs对HUVEC迁移和成管的影响

验证tdDPC-EVs比DPC-EVs更能促进内皮细胞迁移和管腔形成,即血管生成能力。

通过划痕实验和Transwell实验评估细胞迁移,通过Matrigel基质胶上的管形成实验评估成管能力。

6

体内评估tdDPC-EVs对伤口愈合的影响

验证tdDPC-EVs在体内促进伤口愈合和提高愈合质量。

在小鼠背部制作全层皮肤缺损,皮下注射PBS、DPC-EVs或tdDPC-EVs,于第7天和第14天进行伤口拍照、激光多普勒血流检测,以及H&E、Masson、CD31和α-SMA染色评估愈合速度和血管生成。

7

机制探究:RNA-seq和生信分析

筛选tdDPC-EVs处理HUVEC后差异表达的基因,寻找关键转录因子。

对tdDPC-EVs和PBS处理的HUVEC进行RNA-seq,分析差异表达基因,并预测转录因子KLF4的靶基因。

8

机制验证:KLF4/VEGFA轴

验证KLF4是否通过调控VEGFA介导tdDPC-EV的促血管生成作用。

通过qRT-PCR和Western blot验证RNA-seq结果;构建KLF4敲低和过表达载体,检测tdDPC-EVs处理后HUVEC中KLF4和VEGFA的表达及细胞迁移和成管能力;通过双荧光素酶报告实验验证KLF4直接结合VEGFA启动子。

9

比较DPC-EVs和tdDPC-EVs的miRNA组分

探索tdDPC-EVs与DPC-EVs在miRNA水平上的差异,提供可能的上游调控线索。

对DPC-EVs和tdDPC-EVs进行RNA-seq,分析差异miRNA表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高糖DMEM培养基HycloneSH30022.01
DMEM/F-12培养基Gibco12660012
StemPro Accutase试剂GibcoA1110501
碱性成纤维细胞生长因子Peprotech--
表皮生长因子Peprotech--
血小板衍生生长因子Peprotech--
肝素Sigma--
L-抗坏血酸2-磷酸倍半镁盐水合物Sigma--
胎牛血清Biological Industries--
内皮细胞培养基ScienCell1001
内皮细胞生长添加物ScienCell1052
Pierce BCA蛋白测定试剂盒Thermo Fisher Scientific--
PKH26红色荧光细胞连接试剂盒SigmaPKH26PCL
CCK-8试剂盒BeyotimeC0038
抗Ki67抗体SigmaSAB5700770
Transwell 24孔板Corning3422
基质胶BD Biosciences--
RIPA裂解缓冲液----
蛋白酶抑制剂混合物MedChemExpressHY-K0010
BCA蛋白测定试剂盒BeyotimeP0012
聚偏二氟乙烯膜MilliporeIPVH00010
ECL底物MilliporeWBKLS0050
TRIzol试剂Takara9109
Prime Script RT试剂盒TakaraRR036A-1
UltraSYBR荧光定量预混液CWBIOCW0957M
Dynabeads Oligo(dT)25磁珠Invitrogen--
NEB建库试剂盒New England Biolabs7530
双荧光素酶报告系统PromegaE1910
DAPI封片剂SouthernBiotech0100-20
DAPISigma-AldrichD9542-1MG
抗LEF1抗体Cell Signaling Technology2230
抗ALP抗体R&D SystemAF2910
抗CD31抗体ServicebioGB11063-2
抗α-SMA抗体Abcamab124964
抗钙联蛋白抗体Abcamab22595
抗TSG101抗体Abcamab125011
抗CD9抗体Abcamab92726
抗CD81抗体Abcamab109201
抗KLF4抗体Abcamab214666
抗VEGFA抗体Abcamab214424
HRP标记的山羊抗兔IgGSangon BiotechD110058
DyLight 488标记兔抗山羊IgGBOSTERBA1124
DyLight 594标记山羊抗兔IgGBOSTERBA1127
PE标记抗CD29抗体eBioscience112207
PE标记抗CD34抗体BioLegend800504
PE标记抗CD44抗体BioLegend103007
PE标记抗CD90抗体BioLegend140307
PE标记抗CD105抗体BioLegend120407
FITC标记抗CD45抗体BioLegend157213
透射电子显微镜(HT-7700)Hitachi--
EVOS FL Auto 2显微镜InvitrogenAMAFD2000
Olympus IX71光学显微镜Olympus--
激光多普勒血流灌注成像仪Perimed AB--
PANNORAMIC 250 Flash系列数字切片扫描仪3DHISTECH--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
3D培养tdDPC
原代DPCs来源(6周龄C57BL/6小鼠触须垫);3D培养基成分:2% FBS、bFGF 5 ng/ml、EGF 2 ng/ml、PDGF 5 ng/ml、肝素2 μg/ml、L-抗坏血酸2-磷酸倍半镁盐水合物50 μg/ml、青霉素/链霉素;培养时间>5天;接种密度5×10^4 cells/cm^2
阅读提示:Methods: Isolation, culture and identification of DPCs and tdDPCs
EV提取
去EV FBS浓度(10%);培养时间(24小时);超速离心方法(参照文献15)
阅读提示:Methods: Isolation and characterization of EVs
体外功能实验
EVs处理浓度(10 μg/ml);HUVEC来源(Department of Ophthalmology, Xijing Hospital);培养条件(ScienCell内皮细胞培养基)
阅读提示:Methods: Cell cultures, Cell proliferation assay, Cell migration assay, Lumen-formation assay
体内动物模型
小鼠品系、性别、周龄(C57BL/6雄性,6周龄);伤口直径(5 mm);EVs注射剂量(50 μg in 100 μl PBS);注射时间(第0-2天);分组(PBS, DPC-EVs, tdDPC-EVs);样本量(每组10个伤口)
阅读提示:Methods: Animal model, Figure 6 legend
机制验证
KLF4敲低序列(shKLF4)和过表达载体构建方法;tdDPC-EVs处理条件(10 μg/ml);双荧光素酶报告基因中VEGFA启动子区域(2000 bp,含KLF4结合位点)
阅读提示:Methods: Luciferase assay, Results: tdDPC-EVs promote angiogenesis via KLF4-mediated upregulation of VEGFA expression
RNA-seq
RNA提取(TRIzol);建库(NEB kit);测序平台(Illumina HiSeq Xten);差异基因筛选标准(FDR<0.05,|log2FC|>2)
阅读提示:Methods: RNA-sequencing