建立条件性敲除小鼠模型
在卵母细胞中特异性敲除Inhba基因,以获得母源或母源/合子敲除胚胎。
利用Zp3-Cre/LoxP系统,通过交配Inhba-LoxP、Inhba-KO和Zp3-Cre小鼠,获得母源(m-KO)和母源/合子(mz-KO)敲除胚胎,并通过基因分型和ELISA验证敲除效果。
Maternal/zygotic knockout and droplet digital polymerase chain reaction analysis question the role of activin A in preimplantation mouse embryo development†
包含条件性基因敲除小鼠模型、体外卵母细胞成熟实验、时差成像胚胎发育分析、免疫染色、线粒体活性检测及ddPCR基因表达分析等多个独立证据层级,并进行了功能与机制验证。
小鼠卵母细胞 小鼠植入前胚胎 小鼠胚胎成纤维细胞
Zp3-Cre介导的Inhba条件性敲除在卵母细胞中的效率 母源和合子Inhba敲除胚胎的基因型鉴定 MII卵母细胞中线粒体膜电位(JC-1染色) ddPCR检测Inhba和Inhbb mRNA在卵母细胞及各期胚胎中的表达 胚胎发育时差成像参数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在卵母细胞中特异性敲除Inhba基因,以获得母源或母源/合子敲除胚胎。
利用Zp3-Cre/LoxP系统,通过交配Inhba-LoxP、Inhba-KO和Zp3-Cre小鼠,获得母源(m-KO)和母源/合子(mz-KO)敲除胚胎,并通过基因分型和ELISA验证敲除效果。
评估母源激活素A缺失对卵母细胞体外成熟的影响。
从未刺激的雌鼠中分离GV期卵母细胞,进行体外成熟培养,统计MII期比例,并通过免疫染色评估纺锤体形态和染色体排列。
监测母源或母源/合子敲除胚胎的植入前发育动态。
收集合子,在时差成像系统中培养至囊胚期,记录各发育事件的时间点,分析分裂动力学。
评估发育延迟对囊胚细胞谱系分化的影响。
对囊胚进行免疫荧光染色,检测CDX2(滋养外胚层)、SOX17(原始内胚层)和SOX2(上胚层)标记,统计各谱系细胞数量。
探究母源激活素A缺失对卵母细胞线粒体功能的影响。
MII卵母细胞用JC-1染色,评估线粒体膜电位。
定量检测卵母细胞和植入前胚胎中Inhba和Inhbb mRNA的表达。
收集卵母细胞和各期胚胎,提取RNA,进行ddPCR分析,并使用ESC作为阳性对照。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 基因分型 | Phusion HS II聚合酶 | ThermoFisher Scientific | -- |
| EcoRI限制性内切酶 | -- | -- | |
| BamHI限制性内切酶 | -- | -- | |
| 胚胎培养 | M16培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| 矿物油 | Fujifilm | -- | |
| 透明质酸酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| KSOM培养基 | -- | -- | |
| 免疫染色 | Triton X-100 | Sigma-Aldrich | -- |
| 牛血清白蛋白 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Hoechst 33342 | ThermoFisher Scientific | -- | |
| 抗β-微管蛋白-FITC | Sigma-Aldrich | F2043 | |
| 抗CDX2抗体 | BioGenex | MU392A-UC | |
| 抗SOX2抗体 | Abcam | ab97959 | |
| 抗SOX17抗体 | R&D Systems | AF1924 | |
| 驴抗小鼠IgG Alexa Fluor 594 | Invitrogen | A21203 | |
| 驴抗兔Alexa Fluor 647 | Invitrogen | A31573 | |
| 驴抗山羊IgG Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A11055 | |
| 线粒体活性检测 | JC-1染料 | ThermoFisher Scientific | -- |
| ELISA | 激活素A Quantikine ELISA试剂盒 | R&D Systems | DAC00B |
| RNA提取 | RNAqueous-Micro试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 逆转录 | Oligo(dT)12-18引物 | ThermoFisher Scientific | -- |
| Superscript III逆转录酶 | Invitrogen | -- | |
| ddPCR | ddPCR探针预混液 | Bio-Rad | -- |
| Actb TaqMan探针 | Applied Biosystems | Mm01205647_g1 | |
| Inhba TaqMan探针 | Applied Biosystems | Mm00434339_m1 | |
| Inhbb TaqMan探针 | Applied Biosystems | Mm03023992_m1 | |
| QX200微滴生成器 | Bio-Rad | -- | |
| C1000 Touch热循环仪 | Bio-Rad | -- | |
| QX200微滴读取器 | Bio-Rad | -- | |
| 显微成像 | Nikon Ti2-U显微镜 | Nikon | -- |
| ORCA-Flash4.0 LT+相机 | Hamamatsu | -- | |
| RCM1共聚焦模块 | Confocal.nl | -- | |
| Zeiss Axio Observer.Z1显微镜 | Zeiss | -- | |
| 胚胎培养 | PrimoVision成像系统 | -- | -- |
| 细胞培养 | 0.25%胰蛋白酶-EDTA | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 条件性敲除小鼠模型 | 小鼠品系和遗传背景;Zp3-Cre介导的重组效率;基因分型引物和PCR条件。 阅读提示:Methods: Mouse lines; Mouse genotyping; Figure 1 |
| 卵母细胞体外成熟 | 雌鼠年龄和周期状态;卵母细胞采集方法;成熟培养基和培养时间。 阅读提示:Methods: Isolation of germinal vesicle oocytes and in vitro maturation; Figure 2 |
| 胚胎时差成像 | 超排方案;胚胎采集时间;培养条件(培养基、温度、CO2浓度);成像间隔和参数定义。 阅读提示:Methods: Isolation of zygotes for time-lapse imaging; Time-lapse imaging and morphokinetic analysis; Figure 3 |
| 囊胚免疫染色 | 抗体浓度和孵育时间;染色步骤;成像和细胞计数方法。 阅读提示:Methods: Immunofluorescent staining, confocal microscopy, and image processing; Figure 3C-E |
| 线粒体活性检测 | JC-1浓度和孵育时间;成像设置;荧光强度分析方法。 阅读提示:Methods: Detection of mitochondrial activity; Figure 3F-G |
| ddPCR | 样本收集数量(胚胎数/卵母细胞数);RNA提取和逆转录步骤;ddPCR反应体系和探针;数据分析方法。 阅读提示:Methods: Collection of samples for droplet digital polymerase chain reaction; Isolation of RNA and droplet digital polymerase chain reaction assay; Figure 4-5 |