敲低HSPA13通过抑制PI3K/Akt信号通路抑制TGFβ1诱导的RPE上皮-间质转化

Knockdown of HSPA13 Inhibits TGFβ1-Induced Epithelial-Mesenchymal Transition of RPE by Suppressing the PI3K/Akt Signaling Pathway

作者信息Furong Gao, Mengwen Li, Lilin Zhu, Jiao Li, Jie Xu, Song Jia, Qingjian Ou, Caixia Jin, Haibin Tian, Juan Wang, Jingying Xu, Wei Xu, Guo-Tong Xu, Lixia Lu
PMID39226050
发布时间2024-09-03
DOI10.1167/iovs.65.11.1

实验完整度

包含患者ERMs免疫组化、体外细胞实验(hESC-RPE和ARPE-19)、RNA-seq及大鼠PVR模型等至少两个独立证据层级,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

hESC-RPE细胞 ARPE-19细胞 原代小鼠RPE细胞 大鼠PVR模型

重点核对

TGFβ1处理浓度10 ng/mL及处理时间48小时 HSPA13敲低稳定细胞系构建及敲低效率验证 BAPTA/AM浓度10 μM及孵育时间 PVR大鼠模型细胞注射量4 μl(1 × 105 cells/μl)及PRP体积 Western blot检测p-PI3K和p-Akt水平

摘要

目的:本研究旨在探讨HSPA13对视网膜色素上皮(RPE)细胞上皮-间质转化(EMT)和增殖性玻璃体视网膜病变(PVR)发展的影响及其相关分子机制。方法:通过免疫组织化学检测PVR患者视网膜前膜(ERMs)中HSPA13的表达。通过定量PCR(qPCR)、Western blot和划痕愈合实验研究HSPA13敲低对TGFβ1诱导的hESC-RPE细胞EMT的影响。使用Fluo-8/AM孵育测量细胞内Ca2+水平。通过玻璃体腔注射RPE细胞联合富血小板血浆(PRP)诱导大鼠PVR模型。应用RNA-seq研究HSPA13敲低介导的EMT抑制的分子机制。结果:在人类ERMs中检测到HSPA13,且在hESC-RPE细胞中其表达随TGFβ1处理而增加。敲低HSPA13抑制了TGFβ1诱导的EMT和迁移。在PVR大鼠模型中,HSPA13在ERMs中表达,其在RPE细胞中的敲低减少了PVR的发展。与这些观察一致,RNA-seq显示shHSPA13在RPE细胞中全面抑制了TGFβ1诱导的EMT和迁移。机制上,TGFβ1处理增加了细胞内Ca2+水平,导致HSPA13表达上调。HSPA13的下调阻碍了TGFβ1诱导的RPE细胞中PI3K/Akt的磷酸化。结论:我们的研究揭示了HSPA13参与PVR的发展,以及通过PI3K/Akt信号通路参与TGFβ1诱导的RPE EMT。靶向调节RPE细胞EMT的HSPA13相关通路可作为PVR患者的新型治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
探讨HSPA13在RPE细胞EMT及PVR发展中的作用及其分子机制。
核心机制
TGFβ1通过升高细胞内Ca2+水平上调HSPA13表达,进而激活PI3K/Akt信号通路,促进RPE细胞EMT和迁移。
主要证据
在患者ERMs中检测到HSPA13与CK8和α-SMA共定位;TGFβ1处理后hESC-RPE细胞中HSPA13表达上调且细胞内Ca2+升高;HSPA13敲低抑制TGFβ1诱导的EMT和迁移,并降低p-PI3K和p-Akt水平;在PVR大鼠模型中,HSPA13敲低减轻ERM形成和视网膜结构紊乱。
研究意义
靶向HSPA13相关通路可能为PVR患者提供新的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本中HSPA13表达检测

明确HSPA13在PVR患者ERMs中的表达定位及与EMT的关系。

收集PVR患者ERMs,进行免疫荧光染色,检测HSPA13与上皮标志物CK8及间充质标志物α-SMA的共定位。

2

TGFβ1诱导RPE细胞EMT模型建立

体外模拟RPE细胞EMT过程,检测HSPA13的表达变化。

hESC-RPE细胞经10 ng/mL TGFβ1处理48小时,观察细胞形态、标志物表达及HSPA13水平变化。

3

检测TGFβ1对细胞内Ca2+的影响及HSPA13上调的依赖性

验证TGFβ1是否通过升高细胞内Ca2+上调HSPA13表达。

使用Fluo-8/AM探针检测TGFβ1处理后的Ca2+水平;使用BAPTA/AM螯合Ca2+后检测HSPA13表达。

4

HSPA13敲低对TGFβ1诱导EMT的影响

评估HSPA13敲低对RPE细胞EMT进程的影响。

通过慢病毒转染建立HSPA13敲低稳定细胞系,TGFβ1处理后检测EMT标志物表达、细胞形态和迁移能力。

5

RNA-seq分析HSPA13敲低对转录组的影响

从全基因组水平揭示HSPA13敲低抑制EMT的分子机制。

对shScramble和shHSPA13细胞经TGFβ1处理进行RNA-seq,分析差异表达基因、GO富集和KEGG通路。

6

机制验证:PI3K/Akt通路及特异性检测

验证HSPA13是否通过PI3K/Akt通路调控EMT,并排除经典TGFβ/Smad及Wnt/β-catenin通路。

Western blot检测PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白水平,并检测Smad2/3和β-catenin的磷酸化或表达变化。

7

体内PVR模型验证

验证HSPA13敲低在体内对EMT和PVR发展的抑制作用。

建立PVR大鼠模型,注射shScramble或shHSPA13-hESC-RPE细胞与PRP,4周后通过H&E染色和免疫荧光评估视网膜形态和ERM形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F12培养基Gibco--
基因敲除血清替代物Gibco--
MEM非必需氨基酸Gibco--
L-谷氨酰胺Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
β-巯基乙醇Gibco--
基质胶文中未明确说明--
重组人TGFβ1Sino Biological--
BAPTA/AMSelleck Inc.--
Fluo-8/AMBeyotime--
RIPA裂解液Beyotime--
蛋白酶抑制剂混合物TargetMol--
BCA蛋白定量试剂盒Pierce--
PVDF膜Millipore--
增强化学发光系统Pierce--
抗E-cadherin抗体CST14472
抗FN1抗体Proteintech66042
抗HSPA13抗体Proteintech12667
抗α-SMA抗体Abcamab7817
抗CK8抗体Abcamab9023
抗PI3K p85抗体CST4292
抗p-PI3K p85/p55抗体BeyotimeAF5905
抗AKT抗体CST4691
抗p-AKT抗体CST13038
抗ZO-1抗体Thermo617300
TRIzol试剂Takara--
逆转录试剂盒Takara--
SYBR Green预混液Tiangen--
Chromo4热循环仪Bio-Rad--
Nanodrop 2000分光光度计Thermo Fisher Scientific--
pLVXpuro载体文中未明确说明--
Countstar细胞计数仪ALIT Life Science--
OCT包埋剂Tissue-Tek4583
牛血清白蛋白Sangon Biotech--
DAPI文中未明确说明--
Nikon A1R荧光显微镜Nikon--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与EMT诱导
hESC-RPE细胞培养条件:1% Matrigel包被,密度1.5×10^6/孔(6孔板);EMT诱导需KSR饥饿24小时,TGFβ1浓度10 ng/mL,处理48小时。
阅读提示:Materials and Methods: Cell Culture
HSPA13敲低
慢病毒载体pLVXpuro,嘌呤霉素浓度1 ng/mL,筛选时间1周;shRNA靶序列GATCCCCGGCTGACGTCTTCCACGTC。
阅读提示:Materials and Methods: Plasmid Construction and Lentivirus Infection
Ca2+螯合实验
BAPTA/AM浓度10 μM,处理时间48小时;Fluo-8/AM浓度2 μM,负载时间45分钟。
阅读提示:Materials and Methods: Live-Cell Ca2+ Imaging; Results: Figure 2
Western blot检测PI3K/Akt通路
抗体信息:p-PI3K (Beyotime AF5905)、p-AKT (CST 13038);内参β-actin。
阅读提示:Materials and Methods: Antibodies and Reagents; Results: Figure 6
PVR大鼠模型
SD大鼠周龄6周;注射细胞量4 μl(1×10^5 cells/μl)和PRP 4 μl;观察时间点4周。
阅读提示:Materials and Methods: Establishment of the PVR Rat Model; Results: Figure 7