构建AMD大鼠模型并观察KAL表达
评估SI诱导的AMD模型中RPE形态和KAL表达的变化。
对6月龄SD大鼠腹腔注射SI(35 mg/kg)或生理盐水,观察视网膜组织学、胶原沉积、KAL蛋白和mRNA水平。
Kallistatin Deficiency Induces the Oxidative Stress-Related Epithelial-Mesenchymal Transition of Retinal Pigment Epithelial Cells: A Novel Protagonist in Age-Related Macular Degeneration
包含KAL敲除大鼠和转基因小鼠的体内模型、ARPE19细胞体外实验、Snail干预的功能验证及机制验证,证据层级独立且完整。
碘酸钠诱导的AMD大鼠模型 KAL基因敲除SD大鼠 KAL转基因C57BL/6J小鼠 ARPE19细胞系及大鼠原代RPE细胞
SI剂量:35 mg/kg腹腔注射 TGF-β处理浓度:10 ng/mL KAL敲除大鼠构建方法:CRISPR/Cas9 细胞迁移检测时间:16小时 原代RPE细胞来自2周龄大鼠
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估SI诱导的AMD模型中RPE形态和KAL表达的变化。
对6月龄SD大鼠腹腔注射SI(35 mg/kg)或生理盐水,观察视网膜组织学、胶原沉积、KAL蛋白和mRNA水平。
验证KAL缺失是否足以导致RPE功能障碍和EMT。
对比6月龄KAL-KO和WT大鼠的RPE形态、胶原沉积、EMT标志物(E-cadherin、N-cadherin)、MnSOD表达和活性、ROS水平。
验证KAL过表达是否抑制RPE EMT和氧化应激。
使用KAL-TG小鼠和Ad-KAL感染ARPE19细胞,检测EMT标志物、MnSOD表达/活性、ROS水平及细胞迁移能力。
评估KAL是否能逆转TGF-β诱导的RPE EMT。
Ad-KAL或Ad-CON感染的ARPE19细胞用TGF-β(10 ng/mL)处理,检测迁移和EMT标志物变化。
验证Snail是否介导KAL对EMT和氧化应激的抑制作用。
在KAL-KO原代RPE细胞中敲低Snail,在KAL过表达ARPE19细胞中过表达Snail,检测EMT标志物、MnSOD活性和ROS水平。
评估KAL过表达是否能改善SI诱导的AMD样病变。
对KAL-TG和WT小鼠腹腔注射SI(35 mg/kg),7天后进行眼底照相、OCT及H&E染色观察。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Invitrogen | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 胰蛋白酶 | -- | -- | |
| I型胶原酶 | -- | -- | |
| 青霉素和链霉素 | -- | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| 细胞处理 | 重组人TGFβ1蛋白 | Sino Biological Inc. | 10804-H08H |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Gibco | L3000015 |
| Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Gibco | 13778150 | |
| 迁移实验 | Transwell小室 | Corning | 26616 |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| ECL底物 | -- | -- | |
| ChemiDoc Touch化学发光成像系统 | Bio-Rad Life Science | -- | |
| 组织学 | AxioScan.Z1数字切片扫描系统 | Zeiss | -- |
| 氧化应激检测 | ROS检测试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | S0033S |
| Cu/Zn-SOD和Mn-SOD检测试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | S0103 | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| 流式细胞术 | CytoFLEX流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型构建 | SI剂量为35 mg/kg,腹腔注射;对照组给予等量生理盐水;动物为6月龄雄性SD大鼠或C57BL/6J小鼠。 阅读提示:见Methods中Animals部分 |
| 细胞培养 | ARPE19细胞培养条件:10% FBS DMEM,5% CO2,37°C;原代RPE细胞分离自2周龄大鼠,消化酶为0.08%胰蛋白酶和I型胶原酶。 阅读提示:见Methods中Cells部分 |
| 药物处理 | TGF-β处理浓度为10 ng/mL,处理时间未明确说明。 阅读提示:见Methods中Transfection and Treatment部分 |
| 迁移实验 | Transwell实验细胞数5×10^4,迁移时间16小时;伤口愈合实验划痕后培养16小时。 阅读提示:见Methods中Transwell Assay和Wound Healing Assay部分 |
| 氧化应激检测 | ROS检测使用DCFH-DA浓度10 μmol/L,孵育20分钟;MnSOD活性测定步骤需按试剂盒说明。 阅读提示:见Methods中Intracellular ROS Levels Assay和MnSOD Activity Assay部分 |
| 统计设计 | 每组样本量n≥3,数据以mean±S.D表示,两组比较用t检验,多组用单因素方差分析。 阅读提示:见Methods中Statistical Analysis部分 |