疾病模型诱导
建立兔自身免疫性泪腺炎模型,模拟干燥综合征干眼。
手术切除兔左下泪腺获取泪腺上皮细胞,培养后照射,与等量自体外周血淋巴细胞共培养5天,收集激活的淋巴细胞(2×10^6)经耳缘静脉注射回供体兔诱导疾病。
Thymosin β4 Alleviates Autoimmune Dacryoadenitis via Suppressing Th17 Cell Response
研究包含体内动物模型(兔自身免疫性泪腺炎)和体外细胞实验(PBLs与pLGECs共培养),并进行了功能验证(临床评分、组织学)和机制验证(STAT3通路及Colivelin回复实验)。
兔自身免疫性泪腺炎模型 兔外周血淋巴细胞与照射后的泪腺上皮细胞共培养体系 新西兰白兔
rTβ4给药浓度:1000 μg/mL,每天4次,每次50 μL,持续4周 体内实验分组:正常组、模型组、PBS组、rTβ4组,每组6只 体外rTβ4处理浓度:100 ng/mL,处理72小时 体外STAT3激活剂Colivelin浓度:0.5 μM 疾病诱导:自体激活的外周血淋巴细胞(2×10^6)静脉注射
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立兔自身免疫性泪腺炎模型,模拟干燥综合征干眼。
手术切除兔左下泪腺获取泪腺上皮细胞,培养后照射,与等量自体外周血淋巴细胞共培养5天,收集激活的淋巴细胞(2×10^6)经耳缘静脉注射回供体兔诱导疾病。
评估rTβ4滴眼液对已发病模型的治疗效果。
疾病诱导2周后,将兔随机分为正常组、模型组、PBS组和rTβ4组,每天4次(8 am、12 am、4 pm、8 pm)双眼各滴50 μL,持续4周。
评估疾病严重程度和治疗效果。
每两周进行Schirmer试验、泪膜破裂时间测量、角膜荧光素染色评分;治疗结束后取泪腺和结膜进行HE染色和PAS染色,评估淋巴细胞浸润灶、腺泡萎缩和结膜杯状细胞密度。
验证rTβ4对Th17相关基因和炎症介质表达的影响。
收集泪腺组织,用qRT-PCR检测Th17相关基因(RORC、IL-17A、IL-17F、IL-23R、IL-1R1、GM-CSF)和炎症介质(IL-6、IL-1β、IL-23、TNF-α、MMP-9、MMP-2、CXCL-2、CXCL-8、CCL-20)的mRNA表达;Western blot检测IL-17、IL-6、IL-1β蛋白水平。
验证rTβ4在体外对Th17细胞反应的直接抑制作用。
从患病兔分离PBLs,与照射后的pLGECs共培养,加入或不加入100 ng/mL rTβ4,72小时后检测Th17相关基因和IL-17蛋白表达。
验证STAT3通路在rTβ4抑制Th17反应中的作用。
检测体内和体外pSTAT3蛋白表达;体外加入STAT3激活剂Colivelin预处理1小时,再与rTβ4共处理72小时,检测IL-17和pSTAT3蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 新西兰白兔 | Vital River Laboratory Animal Technology | -- |
| 治疗 | 重组胸腺素β4 | Beijing Northland Biotech Co., Ltd. | Lot. Y-20190701 |
| 体外实验 | Colivelin | Santa Cruz Biotechnology Inc. | sc-361153 |
| 荧光素染色 | 荧光素 | -- | -- |
| RNA提取 | EZ-press RNA纯化试剂盒 | EZBioscience | -- |
| RNA质量检测 | NanoDrop ND-2000分光光度计 | NanoDrop Technologies | -- |
| cDNA合成 | 逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| qRT-PCR | FastStart Universal SYBR Green PCR预混液 | Applied Biosystems | -- |
| LightCycler 480 II实时荧光定量PCR仪 | Roche Diagnostics GmbH | -- | |
| Western blot - 一抗 | IL-17抗体 | Cloud-Clone Corp | MAA063Rb21 |
| 磷酸化STAT3 (Y705)抗体 | R&D Systems | MAB4607 | |
| IL-1β抗体 | Cloud-Clone Corp | PAA563Rb51 | |
| IL-6抗体 | Cloud-Clone Corp | MAA079Rb21 | |
| β-肌动蛋白抗体 | ZSGB-BIO | ZB-5301 | |
| Western blot - 二抗 | 辣根过氧化物酶标记的抗小鼠IgG | Cell Signaling Technology | #7076S |
| 辣根过氧化物酶标记的抗豚鼠IgG | Cloud-Clone Corp | SAA544Gu09 | |
| 辣根过氧化物酶标记的抗大鼠IgG | Proteintech | SA00001-15 | |
| Western blot - 成像 | 多光谱成像系统 | UVP, Tanon | -- |
| Western blot - 分析 | Quantity One软件 | Bio-Rad | -- |
| 统计分析 | SPSS 25.0软件 | IBM Corporation | -- |
| GraphPad Prism 8.0 | GraphPad | -- | |
| 图像分析 | ImageJ | National Institutes of Health | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型诱导 | 兔种、体重、手术获取泪腺上皮细胞、共培养时间(5天)、激活淋巴细胞数量(2×10^6)和注射途径 阅读提示:Methods: Animal Experiments, Induction of Autoimmune Dacryoadenitis |
| 药物治疗剂量和频率 | rTβ4浓度(1000 μg/mL)、给药次数(每天4次)和给药量(50 μL) 阅读提示:Methods: Animal Experiments, Grouping and Treatment Procedures |
| 临床评估时间点 | 评估时间:治疗后第2周和第4周;Schirmer试验、BUT、角膜荧光素染色 阅读提示:Methods: Clinical Assessment of Autoimmune Dacryoadenitis and Histologic Analysis |
| 组织学评估 | 淋巴细胞灶定义(>50个淋巴细胞)、计数面积(每4mm2)、杯状细胞计数面积(每4mm2) 阅读提示:Methods: Histologic Analysis of LGs and Conjunctivas |
| 体外实验条件 | PBLs来源(模型兔)、刺激(照射后的pLGECs)、rTβ4浓度(100 ng/mL)、培养时间(72小时)、Colivelin浓度(0.5 μM)和预处理时间(1小时) 阅读提示:Methods: Cell Culture |
| 分子检测 | qRT-PCR引物序列、内参基因(GAPDH)、蛋白检测抗体及稀释比例 阅读提示:Methods: Quantitative RT-PCR, Western Blot Analysis |