建立缺血性视网膜病变动物模型
模拟缺血性视网膜病变(包括糖尿病视网膜病变)以研究发病机制。
使用8-10周龄小鼠建立视网膜IR模型(通过升高眼压至110 mmHg持续50分钟)和STZ诱导的1型糖尿病模型(连续注射STZ 75 mg/kg)。
Upregulation of Epac1 Promotes Pericyte Loss by Inducing Mitochondrial Fission, Reactive Oxygen Species Production, and Apoptosis
包含体外模型(原代人视网膜周细胞高糖处理)和体内模型(视网膜缺血再灌注和糖尿病小鼠模型),并进行了功能验证(Epac1敲除、siRNA和抑制剂)和机制验证(Drp1磷酸化、线粒体分裂、ROS和凋亡)。
原代人视网膜周细胞(HRPCs)高糖处理模型 视网膜缺血再灌注(IR)小鼠模型 链脲佐菌素(STZ)诱导的1型糖尿病小鼠模型 Epac1基因敲除(Epac1−/−)小鼠
小鼠周细胞丢失和毛细血管变性评估:视网膜胰蛋白酶消化和PAS/苏木精染色 Epac1表达上调:免疫荧光染色和Western blot 高糖处理时Epac1特异性siRNA和抑制剂ESI-09的使用浓度和时间 Drp1 S616磷酸化检测:Western blot 线粒体分裂和ROS检测:MitoTracker Green和DHE染色
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟缺血性视网膜病变(包括糖尿病视网膜病变)以研究发病机制。
使用8-10周龄小鼠建立视网膜IR模型(通过升高眼压至110 mmHg持续50分钟)和STZ诱导的1型糖尿病模型(连续注射STZ 75 mg/kg)。
检查IR或糖尿病后周细胞丢失和毛细血管变性。
通过视网膜胰蛋白酶消化和PAS/苏木精染色,计数周细胞和无细胞毛细血管;通过免疫荧光染色检测Epac1表达。
确定Epac1在缺血和糖尿病视网膜中的表达变化。
对胰蛋白酶消化的视网膜血管进行免疫染色,使用抗Epac1、抗NG2(周细胞标记物)和异凝集素B4(血管标记物)共染。
研究高糖对HRPCs中Epac1表达和功能的影响。
将原代人视网膜周细胞在低糖(5 mM)和高糖(25 mM)条件下培养,并应用Epac1特异性siRNA和抑制剂ESI-09。
探讨Epac1是否影响高糖诱导的线粒体分裂和ROS产生。
使用MitoTracker Green和DHE染色,结合共聚焦显微镜和ImageJ分析。
验证Epac1是否通过Drp1磷酸化、caspase 3激活导致周细胞凋亡。
通过Western blot检测Drp1 S616磷酸化、总Drp1、裂解的caspase 3表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 链脲佐菌素 | Sigma-Aldrich | S0130 |
| 免疫染色 | 抗Epac1抗体 | Cell Signaling Technology | 4155S |
| 抗NG2抗体 | MilliporeSigma | AB5320 | |
| 异凝集素B4 | Invitrogen | I21412 | |
| 细胞培养 | ESI-09 | MedKoo Biosciences | 406603 |
| RNA干扰 | Epac1特异性Stealth RNAi siRNA | Thermo Fisher Scientific | HSS115936 |
| 阴性对照medium GC duplex | Thermo Fisher Scientific | 462001 | |
| 转染 | Lipofectamine 2000 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| cAMP检测 | Direct cAMP ELISA试剂盒 | Enzo Biochem | AD1-900-066A |
| RNA提取 | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | -- |
| RT-qPCR | High Capacity逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- |
| iTaq Universal SYBR Green Supermix | Bio-Rad | -- | |
| 线粒体染色 | MitoTracker Green FM | Invitrogen | M7514 |
| 细胞核染色 | Hoechst 33342 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| ROS检测 | 二氢乙啶 | Thermo Fisher Scientific | D11347 |
| Western blot | 磷酸化DRP1 (Ser616)抗体 | Cell Signaling Technology | 3455 |
| DRP1 (D6C7)抗体 | Cell Signaling Technology | 8570 | |
| 裂解的caspase-3 (Asp175) (5A1E)抗体 | Cell Signaling Technology | 9664 | |
| GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 2118 | |
| ECL Prime Western印迹检测试剂 | GE Healthcare Life Sciences | -- | |
| 显微镜 | 共聚焦显微镜 (LSM 800) | Carl Zeiss Inc. | LSM 800 |
| Nikon A1R共聚焦成像系统 | Nikon | -- | |
| 免疫印迹成像 | ChemiDoc Touch成像系统 | Bio-Rad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、年龄、性别、麻醉剂剂量、眼压值、缺血时间、STZ剂量、注射方式、血糖阈值 阅读提示:Methods中的Mice、Retinal Ischemia–Reperfusion (IR) Model、Diabetic Mouse Model |
| 视网膜血管制备与评估 | 固定剂浓度、胰蛋白酶浓度和消化时间、PAS染色步骤、图像采集区域和放大倍数、周细胞和无细胞毛细血管计数标准 阅读提示:Methods中的Retinal Trypsin Digestion Assay及图2、图3图注 |
| 免疫染色 | 抗体货号、稀释度(未提供)、孵育时间和温度、封片剂(未提供)、成像参数 阅读提示:Methods中的Immunostaining of Retinal Vasculature及图1、图3图注 |
| 细胞培养与处理 | 细胞来源、培养条件(培养基、血清浓度未提供)、使用代次、高糖浓度和处理时间、抑制剂浓度和预处理时间、siRNA转染浓度和时间 阅读提示:Methods中的Cell Culture, Treatment, and Intracellular cAMP Determination及图4图注 |
| 线粒体分裂和ROS检测 | 探针浓度、染色时间和温度、图像采集和分析方法(阈值、分割等)、每个条件分析的细胞或视野数 阅读提示:Methods中的Mitochondrial Fission Analysis和Cellular ROS Measurement及图5、图6图注 |
| Western blot | 裂解液配方、抗体信息和稀释度(未提供)、蛋白上样量(未提供)、电压和时间(未提供)、曝光时间(未提供) 阅读提示:Methods中的Western Blot Analysis及图4、图7、图8图注 |