Epac1上调通过诱导线粒体分裂、活性氧产生和凋亡促进周细胞丢失

Upregulation of Epac1 Promotes Pericyte Loss by Inducing Mitochondrial Fission, Reactive Oxygen Species Production, and Apoptosis

作者信息Wenli Yang, Fan Xia, Fang Mei, Shuizhen Shi, William G Robichaux 3rd, Wei Lin, Wenbo Zhang, Hua Liu, Xiaodong Cheng
PMID37651112
发布时间2023-08-01
DOI10.1167/iovs.64.11.34

实验完整度

包含体外模型(原代人视网膜周细胞高糖处理)和体内模型(视网膜缺血再灌注和糖尿病小鼠模型),并进行了功能验证(Epac1敲除、siRNA和抑制剂)和机制验证(Drp1磷酸化、线粒体分裂、ROS和凋亡)。

主要模型

原代人视网膜周细胞(HRPCs)高糖处理模型 视网膜缺血再灌注(IR)小鼠模型 链脲佐菌素(STZ)诱导的1型糖尿病小鼠模型 Epac1基因敲除(Epac1−/−)小鼠

重点核对

小鼠周细胞丢失和毛细血管变性评估:视网膜胰蛋白酶消化和PAS/苏木精染色 Epac1表达上调:免疫荧光染色和Western blot 高糖处理时Epac1特异性siRNA和抑制剂ESI-09的使用浓度和时间 Drp1 S616磷酸化检测:Western blot 线粒体分裂和ROS检测:MitoTracker Green和DHE染色

摘要

目的:缺血性视网膜病变的致病机制复杂且知之甚少。本研究探讨由cAMP直接激活的交换蛋白(Epac)1信号在缺血性视网膜病变(包括威胁视力的糖尿病视网膜病变)周细胞损伤中的作用。方法:采用视网膜缺血再灌注损伤和链脲佐菌素诱导的1型糖尿病小鼠模型研究这些疾病的发病机制。通过Epac1基因敲除小鼠模型确定Epac1信号在缺血性视网膜病变发病机制中的作用。通过使用Epac1特异性RNA干扰和药理学抑制剂在原代人视网膜周细胞中特异性调节Epac1活性,研究Epac1介导的周细胞功能障碍响应高糖的细胞和分子机制。结果:缺血性损伤或糖尿病诱导的视网膜毛细血管变性伴随着小鼠视网膜血管系统(包括内皮细胞和周细胞)中Epac1表达增加。Epac1基因缺失保护了缺血性损伤诱导的小鼠视网膜周细胞丢失和毛细血管变性。此外,高糖诱导的视网膜周细胞中Epac1表达伴随着Drp1磷酸化、线粒体分裂、活性氧产生和caspase 3激活的增加。通过RNA干扰或药理学方法抑制Epac1阻断了高糖介导的线粒体功能障碍和caspase 3激活。结论:我们的研究揭示了Epac1信号在视网膜周细胞线粒体动力学、活性氧产生和凋亡中的重要作用,并确定Epac1是治疗缺血性视网膜病变的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Epac1信号是否参与缺血性视网膜病变中的周细胞损伤及其潜在机制。
核心机制
高糖通过上调Epac1表达,促进Drp1磷酸化,诱导线粒体分裂和ROS产生,进而激活caspase 3导致周细胞凋亡。
主要证据
在IR和糖尿病小鼠模型中,Epac1上调与周细胞丢失和毛细血管变性相关;Epac1缺失可减少这些损伤。在HRPCs中,沉默或抑制Epac1可阻止高糖诱导的Drp1磷酸化、线粒体分裂、ROS产生和caspase 3激活。
研究意义
Epac1是治疗缺血性视网膜病变的潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立缺血性视网膜病变动物模型

模拟缺血性视网膜病变(包括糖尿病视网膜病变)以研究发病机制。

使用8-10周龄小鼠建立视网膜IR模型(通过升高眼压至110 mmHg持续50分钟)和STZ诱导的1型糖尿病模型(连续注射STZ 75 mg/kg)。

2

评估视网膜血管病变

检查IR或糖尿病后周细胞丢失和毛细血管变性。

通过视网膜胰蛋白酶消化和PAS/苏木精染色,计数周细胞和无细胞毛细血管;通过免疫荧光染色检测Epac1表达。

3

评估Epac1在体表达

确定Epac1在缺血和糖尿病视网膜中的表达变化。

对胰蛋白酶消化的视网膜血管进行免疫染色,使用抗Epac1、抗NG2(周细胞标记物)和异凝集素B4(血管标记物)共染。

4

体外培养和模型建立

研究高糖对HRPCs中Epac1表达和功能的影响。

将原代人视网膜周细胞在低糖(5 mM)和高糖(25 mM)条件下培养,并应用Epac1特异性siRNA和抑制剂ESI-09。

5

检测线粒体分裂和ROS产生

探讨Epac1是否影响高糖诱导的线粒体分裂和ROS产生。

使用MitoTracker Green和DHE染色,结合共聚焦显微镜和ImageJ分析。

6

检测信号通路和凋亡

验证Epac1是否通过Drp1磷酸化、caspase 3激活导致周细胞凋亡。

通过Western blot检测Drp1 S616磷酸化、总Drp1、裂解的caspase 3表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
链脲佐菌素Sigma-AldrichS0130
抗Epac1抗体Cell Signaling Technology4155S
抗NG2抗体MilliporeSigmaAB5320
异凝集素B4InvitrogenI21412
ESI-09MedKoo Biosciences406603
Epac1特异性Stealth RNAi siRNAThermo Fisher ScientificHSS115936
阴性对照medium GC duplexThermo Fisher Scientific462001
Lipofectamine 2000Thermo Fisher Scientific--
Direct cAMP ELISA试剂盒Enzo BiochemAD1-900-066A
RNeasy Mini试剂盒Qiagen--
High Capacity逆转录试剂盒Applied Biosystems--
iTaq Universal SYBR Green SupermixBio-Rad--
MitoTracker Green FMInvitrogenM7514
Hoechst 33342Thermo Fisher Scientific--
二氢乙啶Thermo Fisher ScientificD11347
磷酸化DRP1 (Ser616)抗体Cell Signaling Technology3455
DRP1 (D6C7)抗体Cell Signaling Technology8570
裂解的caspase-3 (Asp175) (5A1E)抗体Cell Signaling Technology9664
GAPDH抗体Cell Signaling Technology2118
ECL Prime Western印迹检测试剂GE Healthcare Life Sciences--
共聚焦显微镜 (LSM 800)Carl Zeiss Inc.LSM 800
Nikon A1R共聚焦成像系统Nikon--
ChemiDoc Touch成像系统Bio-Rad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
小鼠品系、年龄、性别、麻醉剂剂量、眼压值、缺血时间、STZ剂量、注射方式、血糖阈值
阅读提示:Methods中的Mice、Retinal Ischemia–Reperfusion (IR) Model、Diabetic Mouse Model
视网膜血管制备与评估
固定剂浓度、胰蛋白酶浓度和消化时间、PAS染色步骤、图像采集区域和放大倍数、周细胞和无细胞毛细血管计数标准
阅读提示:Methods中的Retinal Trypsin Digestion Assay及图2、图3图注
免疫染色
抗体货号、稀释度(未提供)、孵育时间和温度、封片剂(未提供)、成像参数
阅读提示:Methods中的Immunostaining of Retinal Vasculature及图1、图3图注
细胞培养与处理
细胞来源、培养条件(培养基、血清浓度未提供)、使用代次、高糖浓度和处理时间、抑制剂浓度和预处理时间、siRNA转染浓度和时间
阅读提示:Methods中的Cell Culture, Treatment, and Intracellular cAMP Determination及图4图注
线粒体分裂和ROS检测
探针浓度、染色时间和温度、图像采集和分析方法(阈值、分割等)、每个条件分析的细胞或视野数
阅读提示:Methods中的Mitochondrial Fission Analysis和Cellular ROS Measurement及图5、图6图注
Western blot
裂解液配方、抗体信息和稀释度(未提供)、蛋白上样量(未提供)、电压和时间(未提供)、曝光时间(未提供)
阅读提示:Methods中的Western Blot Analysis及图4、图7、图8图注