建立脑肿瘤小鼠模型
在小鼠脑中模拟胶质瘤生长,以便研究肿瘤微环境中的APOE分布。
将ALTS1C1或GL261肿瘤细胞(1×10^5细胞/2μL)颅内注射至C57BL/6J小鼠的右侧纹状体(坐标:前囟后1mm,外侧2mm,深度2.5mm)。手术后第18天处死小鼠收集脑组织。
Activated astrocytes drive the accumulation of apolipoprotein E at the brain tumor edge
研究包含两个小鼠脑肿瘤模型(ALTS1C1和GL261)的体外和体内实验,结合IF、ISH、流式细胞术等多种验证方法,并(隐含)包含功能验证(通过GFAP和APOE表达分析)和机制验证(通过相关性分析)。
ALTS1C1小鼠星形细胞瘤模型 GL261小鼠胶质母细胞瘤模型
小鼠品系:6-8周龄C57BL/6J雄性小鼠 细胞株:ALTS1C1和GL261 细胞注射量:1×10^5细胞/2μL,颅内注射 组织分区:肿瘤核心、肿瘤边缘(距肿瘤边界200μm)、瘤周正常组织(距肿瘤边界200-400μm) 统计分析:双尾非配对Student t检验,p<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在小鼠脑中模拟胶质瘤生长,以便研究肿瘤微环境中的APOE分布。
将ALTS1C1或GL261肿瘤细胞(1×10^5细胞/2μL)颅内注射至C57BL/6J小鼠的右侧纹状体(坐标:前囟后1mm,外侧2mm,深度2.5mm)。手术后第18天处死小鼠收集脑组织。
确定APOE和胆固醇在肿瘤不同区域的积累情况。
通过Filipin III染色检测胆固醇,通过免疫荧光(IF)染色检测APOE,并使用QuPath软件将肿瘤周围组织分为肿瘤核心、肿瘤边缘和瘤周正常组织,进行定量分析。
确定哪些细胞在肿瘤边缘和核心产生APOE。
通过GFAP免疫荧光染色鉴定活化星形胶质细胞,通过原位杂交(ISH)检测APOE mRNA,并结合IF和ISH双重染色,量化GFAP+区域内APOE mRNA的分布。
评估肿瘤相关巨噬细胞对APOE积累的贡献。
使用流式细胞术分析肿瘤核心和周围组织中免疫细胞的组成,并通过CD68免疫荧光染色和APOE共染色,定量CD68+巨噬细胞中APOE的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | 12100-046 |
| 胎牛血清 | Gibco | 16000-044 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| 磷酸盐缓冲液 | Biological Industries | 02-023-5A | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Gibco | 15400-054 | |
| 组织脱水 | 蔗糖 | Sigma | S0389 |
| 组织包埋 | OCT包埋剂 | Leica | 14020108926 |
| 组织切片 | 冷冻切片机 | Leica | CM1850 |
| 盐载玻片 | MUTO PURE CHEMICALS | 511614 | |
| 组织固定 | 甲醇 | Merck | 33213-2.5L |
| 组织染色 | 伊红溶液 | Surgipath | 82219 |
| 组织脱水 | 乙醇 | Merck | 32221-2.5L |
| 免疫荧光 | 吐温20 | Merck | P1379 |
| 赫斯特33342 | Thermo Fisher | 1871965 | |
| CD68抗体 | Bio-Rad | MCA1957GA | |
| GFAP抗体 | Abcam | ab7260 | |
| APOE抗体 | Sigma | 178479 | |
| 原位杂交 | ViewRNA荧光组织原位杂交试剂盒 | Thermo Fisher | QVT0600C |
| Apoe靶探针 | Thermo Fisher | VB1-10244-VT | |
| 含DAPI的Prolong抗淬灭封片剂 | Invitrogen | P36931 | |
| 组织固定 | 疏水阻隔笔 | VECTOR LABORATORY | H-4000 |
| 染色 | 非律平III | Sigma | SAE0087 |
| 碘化丙啶 | Sigma | P4170 | |
| 封片 | 封片剂 | VECTOR LABORATORY | H-1000-10 |
| 封片剂 | VECTOR LABORATORY | H-5000 | |
| 显微镜 | 荧光显微镜 | ZEISS | Axioskop |
| 相机 | ZEISS | Axiocam | |
| 共聚焦显微镜 | ZEISS | LSM780 | |
| 颅内注射 | 脑立体定位仪 | David Kopf Instrument | -- |
| 骨蜡 | ETHICON | W810 | |
| 缝合线 | UNIK SURGICAL SUTURES MFG | ST174 | |
| 组织分离 | Tenbroeck研磨器 | DWK life science | 885000-0015 |
| 红细胞裂解缓冲液 | Thermo Scientific | 00-4300-54 | |
| Percoll溶液 | GE Healthcare | 17-0891-01 | |
| ACCUMAX溶液 | STEMCELL TECHNOLOGY | 07921 | |
| 流式细胞术 | Fc受体阻断剂 | BD | 553142 |
| 山羊血清 | Thermo Scientific | 16210064 | |
| CD45抗体 | BD | 552848 | |
| CD11b抗体 | BD | 550993 | |
| BD Cytofix/Cytoperm固定/透化试剂盒 | BD | 554714 | |
| APOE抗体(NOVUS) | NOVUS | NB110-60531PE | |
| 流式细胞仪 | BD | FACSAria |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞类型:ALTS1C1, ALTS1C1-GFP, GL261;培养基:DMEM+10%FBS+1%P/S;胰酶:0.5% Trypsin-EDTA;传代周期:每2-3天 阅读提示:Materials and methods, Cell line |
| 动物模型 | 小鼠品系和性别:C57BL/6J雄性,6-8周龄;麻醉:Zoletil-Rompun混合液(75% Zoletil 50+25% Rompun 20),腹腔注射2 μL/g;注射细胞量:1×10^5 cells/2 μL;注射坐标:前囟后1mm,外侧2mm,深度2.5mm;注射速度:1 μL/min;处死时间:第18天;伦理批准号:IACUC 107042 阅读提示:Materials and methods, Animal, Intracranial injection |
| 组织采集与切片 | 固定:4% PFA灌注;后固定:4% PFA 4°C 18h;脱水:10%蔗糖2h,20%蔗糖18h;包埋:OCT;切片厚度:10 μm;切片温度:-20°C 阅读提示:Materials and methods, Tissue collection for histological analysis |
| 免疫荧光染色 | 固定:95%甲醇-20°C 10min;蛋白酶处理:40°C 8min;封闭:5%FBS+0.1%TWEEN20;一抗孵育:4°C过夜;二抗:RT 1h;核染:Hoechst 1.25 μg/mL;抗体稀释比例:CD68 1:200, GFAP 1:400, APOE 1:1000 阅读提示:Materials and methods, Histological analysis—immunofluorescence (IF) staining |
| 原位杂交(ISH) | 预处理:4% PFA固定4°C 20min;蛋白酶处理:40°C 10min;探针杂交:Apoe靶探针40°C 2h;信号放大:pre-amplifier 30min, amplifier 30min, label probe 30min;封片:Prolong antifade with DAPI 阅读提示:Materials and methods, Histological analysis—in situ hybridization staining |
| 流式细胞术 | 组织分离:tumor和brain分别处理;阻断:FcR blocking reagent;表面染色:CD45, CD11b;固定/透化:BD Cytofix/Cytoperm;胞内染色:APOE;检测:BD FACSAria III;数据:FlowJo V10.6.2 阅读提示:Materials and methods, Brain tissue dissociation for flow cytometry analysis, Tumor tissue dissociation for flow cytometry analysis, Flow cytometry analysis |