玻璃化冷冻诱导溶酶体组织蛋白酶B激活扰乱小鼠卵母细胞纺锤体组装检查点功能

Vitrification-induced activation of lysosomal cathepsin B perturbs spindle assembly checkpoint function in mouse oocytes

作者信息Ahmed Z Balboula, Karen Schindler, Tomoya Kotani, Manabu Kawahara, Masashi Takahashi
PMID32634244
发布时间2020-09-01
DOI10.1093/molehr/gaaa051

实验完整度

研究包含体外小鼠卵母细胞模型,综合了表型分析(染色体排列、纺锤体形态)、功能验证(SAC功能检查、K-MT附着检测)、机制验证(溶酶体、CTSB/caspase 3活性检测及抑制剂恢复实验)和体内相关性分析(非整倍性计数)。

主要模型

小鼠GV期卵母细胞 体外成熟培养系统

重点核对

卵母细胞来源:6-8周龄CD-1雌鼠,注射PMSG 44小时后收集GV期卵母细胞 玻璃化冷冻方案:冷冻环技术,冷冻保护剂为EG+DMSO+海藻糖,平衡液和玻璃化液成分及处理时间 SAC功能检测:诺考达唑和依托泊苷处理,观察第一极体排出率 MAD2定位检测:免疫荧光定量着丝粒MAD2荧光强度 CTSB/caspase 3活性检测:Magic Red CTSB检测试剂盒和Caspase 3 (DEVD)2检测试剂盒

摘要

随着生育年龄增加且与不孕相关,女性配子冷冻保存在辅助生殖技术中日益普遍。然而,玻璃化冷冻卵母细胞的发育能力仍然较低。玻璃化冷冻后卵母细胞质量下降的潜在机制在很大程度上尚不清楚。使用冷冻环技术和二甲基亚砜、乙二醇和海藻糖作为冷冻保护剂对小鼠卵丘-卵母细胞复合体进行玻璃化冷冻。比较新鲜和玻璃化/解冻卵母细胞的染色体排列、纺锤体形态、着丝粒-微管附着、纺锤体组装检查点(SAC)和非整倍性。尽管大多数玻璃化卵母细胞排出了第一极体(PB),但它们在MII期染色体排列异常、纺锤体形成异常和非整倍性显著增加。与对照组相比,玻璃化卵母细胞在诺考达唑和依托泊苷存在下排出第一极体,而这些药物应以SAC依赖的方式诱导MI期阻滞。玻璃化卵母细胞着丝粒上必需SAC蛋白MAD2的荧光强度降低,表明玻璃化/解冻后SAC功能减弱。此外,我们发现玻璃化相关应激破坏了溶酶体功能并刺激了组织蛋白酶B活性,随后激活了caspase 3。用组织蛋白酶B或caspase 3抑制剂处理后,玻璃化卵母细胞中MAD2定位和SAC功能得到恢复。这项研究是使用小鼠卵母细胞进行的,因此,在将这些发现应用于IVF诊所之前,必须先用人类卵母细胞确认这些结果。在此,我们揭示了有助于理解玻璃化冷冻如何损害卵母细胞质量的潜在分子途径。调节这些途径将是提高玻璃化冷冻后卵母细胞质量并可能提高玻璃化冷冻方案效率的一步。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
玻璃化冷冻如何损害卵母细胞质量?其潜在分子机制是什么?
核心机制
玻璃化冷冻应激破坏溶酶体功能,刺激组织蛋白酶B(CTSB)活性,进而激活caspase 3,导致纺锤体组装检查点(SAC)功能减弱,表现为MAD2着丝粒定位减少,最终导致非整倍性增加。
主要证据
小鼠GV期卵母细胞玻璃化冷冻后,出现染色体排列异常、纺锤体异常、K-MT附着缺陷、SAC功能减弱(诺考达唑和依托泊苷下仍排出PB)、MAD2定位减少,同时CTSB和caspase 3活性升高;使用E-64或Z-VAD-FMK抑制CTSB或caspase 3可恢复MAD2定位和SAC功能,并降低非整倍体率。
研究意义
揭示了玻璃化冷冻损害卵母细胞质量的分子途径,为改进玻璃化冷冻方案、提高卵母细胞质量和玻璃化冷冻效率提供了潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

卵母细胞玻璃化冷冻与体外成熟

建立玻璃化冷冻模型,评估玻璃化冷冻对GV期卵母细胞成熟过程的影响

对GV期卵母细胞进行玻璃化冷冻,解冻后进行体外成熟(IVM),观察存活率、GVBD和第一极体排出率。

2

染色体排列和纺锤体形态分析

评估玻璃化冷冻对卵母细胞成熟过程中染色体排列和纺锤体形态的影响

在MI和MII阶段,通过免疫荧光染色(α-tubulin和DAPI)和共聚焦显微镜观察染色体排列和纺锤体形态,并进行定量统计。

3

K-MT附着分析

检测玻璃化冷冻对卵母细胞建立稳定着丝粒-微管附着的影响

通过冷稳定微管实验,在冰上处理卵母细胞以去聚合不稳定微管,免疫染色检测着丝粒和微管,分析K-MT附着类型和未附着着丝粒比例。

4

SAC功能检测

验证玻璃化冷冻是否导致SAC功能减弱

使用诺考达唑(微管解聚剂)和依托泊苷(DNA损伤诱导剂)处理新鲜和玻璃化卵母细胞,观察第一极体排出率;通过免疫荧光检测MAD2在着丝粒的定位,评估SAC信号。

5

溶酶体功能及CTSB/caspase 3活性检测

探究玻璃化冷冻对溶酶体功能及CTSB和caspase 3活性的影响

利用LysoSensor Green DND检测溶酶体活性,利用Magic Red CTSB检测试剂盒和Caspase 3 (DEVD)2检测试剂盒分别检测CTSB和caspase 3活性。

6

凋亡检测

评估玻璃化冷冻是否诱导卵母细胞凋亡

通过TUNEL检测MII期卵母细胞DNA断裂。

7

抑制剂处理及功能恢复验证

验证抑制CTSB或caspase 3是否恢复SAC功能并降低非整倍性

在IVM培养基中添加CTSB抑制剂E-64或caspase 3抑制剂Z-VAD-FMK,处理后分析SAC功能(诺考达唑/依托泊苷存在下的PBE率)、MAD2定位及非整倍性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
孕马血清促性腺激素Lee BioSolutions493-10-10
MEM培养基----
二甲基亚砜MilliporeSigma276855
乙二醇MilliporeSigma102466
海藻糖MilliporeSigmaT0167
诺考达唑MilliporeSigmaM1404
依托泊苷MilliporeSigmaE1383
E-64MilliporeSigmaE3132
Z-VAD-FMKPromegaG7231
含DAPI的Vectashield封片剂Vector Laboratories--
α-微管蛋白-Alexa Fluor 488偶联物Life Technologies322
CREST自身免疫血清Antibodies Incorporated15-234
MAD2抗体BiolegendPRB-452C
Magic Red组织蛋白酶B检测试剂盒Immunochemistry Technologies938
Caspase 3 (DEVD)2检测试剂盒Immunochemistry Technologies--
LysoSensor Green DNDMolecular ProbesL7535
TUNEL检测试剂盒Roche Applied Science--
单星素MilliporeSigmaM8515
Leica SP5共聚焦显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
卵母细胞收集与培养
小鼠品系和年龄(CD-1,6-8周龄)、PMSG priming浓度和时间、卵母细胞收集培养基(MEM+PVP)、IVM培养基(CZB)、培养条件(37°C,5% CO2)、Met I和Met II收集时间
阅读提示:Materials and Methods: Oocyte collection and culture
玻璃化冷冻与解冻
冷冻环类型、冷冻保护剂组成和浓度(平衡液:7.5% EG + 7.5% DMSO + 0.25 M trehalose;玻璃化液:15% EG + 15% DMSO)、平衡时间(3分钟)、玻璃化液处理时间(40-45秒)、液氮保存时间、解冻步骤(梯度海藻糖浓度和时间)
阅读提示:Materials and Methods: Oocyte vitrification and thawing
SAC功能检测
诺考达唑和依托泊苷的浓度和处理时间(GVBD后加入)、PBE计数时间(IVM 16小时)、MAD2免疫荧光染色和定量方法
阅读提示:Results: The SAC is weakened in vitrified oocytes; Figure legends 3 and 4
CTSB和caspase 3活性检测
Magic Red CTSB检测试剂盒和Caspase 3 (DEVD)2试剂盒的使用浓度(反应液稀释度:1 μl DMSO稀释液加入250 μl CZB)、孵育时间(25分钟)、Hoechst 33342浓度(25 μg/ml)和额外孵育时间(10分钟)
阅读提示:Materials and Methods: Detection of intracellular cathepsin B and caspase activities
非整倍性检测
单星素(monastrol)浓度(100 μM)和处理时间(2小时)、着丝粒计数方法(CREST抗体)、判读标准(大于或小于40个着丝粒视为非整倍体)
阅读提示:Materials and Methods: In situ chromosome counting; Figure 1 legend