建立CVB3诱导的急性病毒性心肌炎小鼠模型
观察KLF10在心肌炎中的表达变化及病理特征。
C57BL/6小鼠腹腔注射1500 TCID50 CVB3,在感染后不同时间点检测心脏组织炎症、病毒滴度和KLF10表达。
Kruppel-like factor 10 protects against acute viral myocarditis by negatively regulating cardiac MCP-1 expression
包含CVB3感染小鼠模型、KLF10敲除小鼠、骨髓嵌合、AAV9过表达、体外心肌细胞实验、ChIP、荧光素酶报告基因及功能验证,多层次验证机制。
C57BL/6小鼠CVB3诱导的急性病毒性心肌炎模型 KLF10基因敲除小鼠 原代新生小鼠心肌细胞 HEK293细胞
CVB3感染剂量:1500 TCID50,腹腔注射 KLF10表达下调:mRNA和蛋白水平 KLF10缺陷对病毒复制和心肌细胞死亡无直接影响 MCP-1启动子上的CACCC位点 AAV9介导的KLF10过表达:3×10^10基因组拷贝,尾静脉注射
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
观察KLF10在心肌炎中的表达变化及病理特征。
C57BL/6小鼠腹腔注射1500 TCID50 CVB3,在感染后不同时间点检测心脏组织炎症、病毒滴度和KLF10表达。
评估KLF10缺失对病毒性心肌炎严重程度的影响。
KLF10敲除小鼠和野生型小鼠感染CVB3,监测生存率、体重、心脏功能、病毒复制和炎症浸润。
确定KLF10在造血细胞和非造血细胞中的相对作用。
将WT或KLF10-/-骨髓移植到致死照射的WT或KLF10-/-受体小鼠中,8周后感染CVB3,比较心肌炎程度。
验证KLF10过表达能否减轻病毒性心肌炎。
尾静脉注射AAV9-KLF10或对照病毒,4周后感染CVB3,评估心肌炎严重程度。
研究KLF10对CVB3复制和心肌细胞死亡的影响。
分离原代心肌细胞,感染CVB3,检测病毒RNA、蛋白和细胞凋亡。
确定KLF10是否调节MCP-1表达。
检测KLF10缺陷和WT心肌细胞在CVB3感染后的MCP-1表达。
验证MCP-1在KLF10缺陷加重心肌炎中的作用。
使用抗MCP-1抗体或同型对照处理KLF10-/-和WT小鼠,感染CVB3后比较心肌炎。
阐明KLF10调控MCP-1转录的机制。
使用ChIP、荧光素酶报告基因、共免疫沉淀等方法验证KLF10结合MCP-1启动子并与HDAC1相互作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | II型胶原酶 | Sigma | -- |
| M199培养基 | -- | -- | |
| 杜氏改良Eagle培养基 | GIBCO | -- | |
| RNA提取和Q-PCR | RNAiso试剂 | Takara | 9109 |
| 逆转录试剂盒 | Takara | DRR063A | |
| 定量PCR试剂盒 | Takara | DRR041A | |
| 蛋白质印迹 | complete lysis-M裂解缓冲液 | Roche | -- |
| BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo | 155209 | |
| 抗KLF10抗体 | Abcam | ab73537 | |
| 抗VP1抗体 | DAKO | 5-D8/1 | |
| Super Signal West Pico化学发光底物 | Pierce | -- | |
| 免疫沉淀 | 抗Flag磁珠 | Santa Cruz | sc-2003 |
| 抗KLF10抗体 | CST | 8146S | |
| 细胞分离 | 透明质酸酶 | Roche | -- |
| Percoll分离液 | GE Healthcare | -- | |
| 流式细胞术 | CD45.2-APC/Cy7抗体(克隆104) | BD Pharmingen | -- |
| CD11b-FITC抗体(克隆M1/70) | BD Pharmingen | -- | |
| Ly6G-PerCP/Cy5.5抗体(克隆1A8) | BD Pharmingen | -- | |
| Ly6C-PE/Cy7抗体(克隆AL-21) | BD Pharmingen | -- | |
| CD3-PerCP抗体(克隆145-2C11) | BD Pharmingen | -- | |
| CD4-FITC抗体(克隆RM4-5) | BD Pharmingen | -- | |
| CD8-PE抗体(克隆53-6.7) | BD Pharmingen | -- | |
| 抗小鼠Fc受体阻断剂 | Miltenyi | -- | |
| TUNEL染色 | TMR(红色)原位凋亡检测试剂盒 | Roche Diagnostic | 12156792910 |
| 超声心动图 | Vevo 2100高分辨率微型超声系统 | Visualsonics | -- |
| 组织学 | 尼康Eclipse TE2000-S显微镜 | Nikon | -- |
| 免疫组织化学 | 小鼠和兔特异性HRP/DAB检测免疫组化试剂盒 | Abcam | ab64264 |
| 抗CD11b抗体 | Abcam | ab133357 | |
| 抗裂解caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9664 | |
| 荧光素酶报告基因实验 | PGL3增强子载体 | Promega | -- |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E10910 | |
| 染色质免疫沉淀 | MAGnify CHIP试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 药物处理 | LY294002(PI3K抑制剂) | -- | -- |
| BAY11-7082(IκB-α抑制剂) | -- | -- | |
| 体内实验 | 抗MCP-1抗体(克隆2H5) | Bioxcell | -- |
| AAV9-GFP病毒 | Shanghai Genechem | -- | |
| AAV9-KLF10病毒 | Shanghai Genechem | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| VMC模型建立 | 小鼠品系、周龄、性别、CVB3毒株和剂量 阅读提示:见Materials and methods-小鼠和病毒 |
| 骨髓嵌合实验 | 照射剂量、供体骨髓细胞数量、重建时间 阅读提示:见Materials and methods-生成BM嵌合小鼠 |
| AAV9过表达 | AAV9-KLF10滴度、注射体积和途径、感染后时间 阅读提示:见Materials and methods-重组AAV和感染小鼠 |
| 细胞分离和培养 | 心肌细胞分离方法、培养基、胶原酶浓度和消化时间 阅读提示:见Materials and methods-细胞培养 |
| 病毒复制检测 | 病毒RNA引物序列、Q-PCR标准化方法 阅读提示:见Materials and methods-RNA提取和Q-PCR |
| MCP-1表达检测 | 心肌细胞感染MOI、检测时间点 阅读提示:见Results-损失KLF10促进...及图7 |
| MCP-1阻断实验 | 抗体剂量、注射时间、感染剂量 阅读提示:见Results-阻断MCP-1...及图8 |
| 分子机制实验 | ChIP抗体、引物序列、荧光素酶报告质粒构建 阅读提示:见Results-KLF10与HDAC1...及图9 |