CF12单克隆抗体的开发与表征
产生并纯化一种能够增强FSH活性的单克隆抗体,并确认其纯度和结合特异性。
用rhFSH免疫小鼠,融合脾细胞与Sp2/O细胞,通过体外FSH和LH生物测定筛选克隆,选定CF12克隆,生成工作细胞库。通过SDS-PAGE和SEC分析纯度,通过ELISA测定与rhFSH、rhLH和hCG的结合亲和力。
Monoclonal antibody potentiating gonadotropin activity in vitro and in vivo in male and female rats and in ewes
包含体外细胞实验、未成熟大鼠体内实验、无精子症大鼠模型和母羊排卵实验等多个独立证据层级,并明确进行功能验证(排卵、精子发生)和机制验证(cAMP、EC50、Emax)。
表达人FSH受体的HEK293细胞(HEK293 hFSH-R GloSensor细胞) 小鼠睾丸间质瘤细胞(mLTC-1) 未成熟Wistar Han大鼠 成年无精子症Wistar Han大鼠 初产Ile de France母羊
CF12 mAb剂量:体内实验中测试浓度范围0.005至4 μg/注射(未成熟大鼠),母羊实验中每只1 mg,成年大鼠实验中20 μg/kg 激素处理方案:未成熟雌性大鼠用3.5 IU hCG + 0.5 IU rhFSH,皮下注射,每日两次,持续3天;未成熟雄性大鼠用1.5 IU hCG,皮下注射,每日一次,持续4天 无精子症模型:成年大鼠用GnRH拮抗剂(2 mg/kg)在第1天和6周后(D42)注射,7周后开始激素治疗,持续8周 母羊排卵实验:用孕激素海绵(Chronogest® CR,20 mg氟孕酮醋酸酯)同步发情14天,然后pFSH组或CF12 mAb组处理 检测指标:卵巢重量、精囊重量、精子计数、孕酮分泌
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
产生并纯化一种能够增强FSH活性的单克隆抗体,并确认其纯度和结合特异性。
用rhFSH免疫小鼠,融合脾细胞与Sp2/O细胞,通过体外FSH和LH生物测定筛选克隆,选定CF12克隆,生成工作细胞库。通过SDS-PAGE和SEC分析纯度,通过ELISA测定与rhFSH、rhLH和hCG的结合亲和力。
在细胞水平上检测CF12 mAb是否增强FSH和LH/CG诱导的cAMP产生和孕酮分泌。
使用HEK293 hFSH-R GloSensor细胞和mLTC-1细胞,将不同浓度的rhFSH、rhLH或hCG与固定剂量CF12 mAb(10 μg/mL)预孵育后刺激细胞,测定cAMP产生;在mLTC-1细胞中测定孕酮分泌。同时测试CF12 mAb对hTSH的影响。
在未成熟雌性和雄性大鼠中确认CF12 mAb对FSH和LH/CG活性的增强作用。
采用Steelman和Pohley生物测定(雌性)和Van Hell生物测定(雄性),将不同剂量的CF12 mAb与激素混合后注射,测定卵巢重量和精囊重量。
检验CF12 mAb联合促性腺激素是否能恢复GnRH拮抗剂诱导的无精子症大鼠的精子发生。
用GnRH拮抗剂处理大鼠诱导无精子症,然后分组治疗:激素单独(两种剂量)或激素加CF12 mAb(20 μg/kg,每周三次),持续8周。评估睾丸重量、精子细胞计数和附睾精子计数。
检验CF12 mAb单独使用能否通过增强内源性促性腺激素活性诱导排卵。
初产母羊同步发情后,分为pFSH组和CF12 mAb组。CF12 mAb组给予1 mg CF12 mAb两次(间隔24小时),pFSH组给予pFSH两次。通过腹腔镜检查黄体数量,通过ELISA测定孕酮水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | MEM培养基 | -- | -- |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 遗传霉素 | -- | -- | |
| 潮霉素 | -- | -- | |
| 庆大霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | 果纳芬(重组人FSH) | Merck Serono | 3400936348110 |
| 乐芮(重组人LH) | Merck Serono | 3400935496669 | |
| 人绒毛膜促性腺激素(ENDO5000) | IBSA Pharma | 3400930229392 | |
| 美诺孕(人绝经期促性腺激素) | Ferring Pharmaceuticals | 3400935681614 | |
| 费蒙格(地加瑞克) | Ferring Pharmaceuticals | 3400939432687 | |
| 高纯度猪FSH | Jean-François Beckers' laboratory | -- | |
| Chronogest® CR(氟孕酮醋酸酯) | Intervet | -- | |
| ELISA | Immulon 2HB板 | Nunc | -- |
| 辣根过氧化物酶标记的抗IgM | -- | -- | |
| TMB底物 | -- | -- | |
| 硫酸 | -- | -- | |
| 山羊抗小鼠IgG抗体 | Uptima, Interchim | -- | |
| Immuno Maxisorp板 | Thermo Scientific Nunc | -- | |
| 小鼠抗孕酮单克隆抗体 | -- | -- | |
| 孕酮-11α-半琥珀酸-碱性磷酸酶 | -- | -- | |
| 细胞刺激 | GloSensor™ cAMP试剂 | Promega | -- |
| cAMP检测 | HitHunter® cAMP检测试剂盒 | DiscoverX, Eurofins | -- |
| 检测 | POLARstar Omega酶标仪 | BMG Labtech | -- |
| ELISA | ELISA读板器 | -- | -- |
| 色谱 | 高效液相色谱系统 | -- | -- |
| Superose 6 10/300 GL色谱柱 | -- | -- | |
| 细胞计数 | Malassez血细胞计数板 | -- | -- |
| 样本采集 | BD Vacutainer®肝素管 | Dutscher | -- |
| 统计 | GraphPad Prism 10 | GraphPad Software, Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外cAMP实验 | 细胞密度:80,000细胞/孔;CF12 mAb浓度:10 μg/mL;激素浓度梯度;预孵育条件(37°C, 20分钟);刺激时间 阅读提示:详见Methods部分‘Activity of CF12 mAb in vitro on gonadotropins’及Figure 2、3图注 |
| 未成熟大鼠实验 | 动物品系、年龄、性别;激素剂量(hCG、rhFSH);CF12 mAb剂量范围(0.005-4 μg);注射途径、频率、持续时间;检测指标 阅读提示:详见Methods部分‘Activity of CF12 mAb in vivo in immature rats’及Figure 4图注 |
| 无精子症大鼠模型 | GnRH拮抗剂剂量(2 mg/kg)和注射时间(第1天和第42天);激素治疗剂量(hCG、hMG)和频率;CF12 mAb剂量(20 μg/kg)和频率;治疗周期(8周);检测方法(睾丸/附睾精子计数) 阅读提示:详见Methods部分‘Adult azoospermic rat model: treatment and analysis’及Figure 5图注 |
| 母羊排卵实验 | 母羊品种、初产;发情同步方案(孕激素海绵类型、剂量、时长);CF12 mAb剂量(1 mg)和注射频率;pFSH剂量和注射方案;排卵检测方法(腹腔镜检查时间);孕酮检测时间点 阅读提示:详见Methods部分‘Effect of CF12 mAb on ovulation in ewes in vivo’及Figure 6图注 |