样本采集与细胞学制备
获取肾病变细胞学样本并进行制片。
对89例肾病变进行超声引导FNA(22G)或CT引导CB(18G)伴TP,涂片用H&E或Giemsa染色,液基制片用Papanicolaou染色;部分FNA样本制备细胞块,并用于H&E或ICC染色。
Cytological Diagnosis by Fine-Needle Aspiration or Core Biopsy with Touch Preparation for Renal Cystic or Solid Lesions: A Single-Center Clinicopathological Analysis
回顾性分析89例肾穿刺细胞学样本,22例有组织病理对照,存在细胞学-组织学比较和部分免疫组化验证,但样本量小且无前瞻性功能验证或动物实验。
肾穿刺细胞学样本(89例) 超声引导细针穿刺(FNA)样本 CT引导核心活检(CB)伴触觉制备(TP)样本 手术病理组织标本(22例)
穿刺方式(超声引导FNA或CT引导CB伴TP)及针规格(22G或18G) 病变影像特征分类(囊性、实性、混合囊实性) 细胞学诊断分类标准(非诊断性、阴性/良性、非典型、可疑恶性、恶性) 组织病理对照标本来源(CB、肿瘤切除、肾切除) 免疫细胞化学染色标记物(如CAIX、GATA3、p63)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取肾病变细胞学样本并进行制片。
对89例肾病变进行超声引导FNA(22G)或CT引导CB(18G)伴TP,涂片用H&E或Giemsa染色,液基制片用Papanicolaou染色;部分FNA样本制备细胞块,并用于H&E或ICC染色。
对细胞学样本进行诊断分类。
将细胞学诊断分为非诊断性(0分)、阴性/良性(1分)、非典型(2分)、可疑恶性(3分)或恶性(4分)。
将细胞学诊断与组织病理学诊断进行比较。
对22例具有组织病理学标本的病例,将细胞学诊断与CB、肿瘤切除或肾切除标本的组织学诊断进行相关性分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本采集 | 穿刺方式(FNA或CB伴TP)、针规格(22G或18G)、引导方式(超声或CT) 阅读提示:Methods部分:所有病例采用经皮超声引导FNA或CT引导CB伴TP,细针22G,核心针18G。 |
| 细胞学制备 | 涂片染色方法(H&E或Giemsa)、液基制片染色(Papanicolaou)、细胞块制备方法(福尔马林固定、石蜡包埋) 阅读提示:Methods部分:涂片采用H&E或Giemsa染色,液基制片采用Papanicolaou染色,细胞块制备用于H&E或ICC染色。 |
| 细胞学诊断 | 诊断分类标准(非诊断性、阴性/良性、非典型、可疑恶性、恶性) 阅读提示:Methods部分:细胞学诊断分类为0-4分。 |
| 组织病理学对照 | 组织病理标本来源(CB、肿瘤切除、肾切除)、对照病例数量(22例) 阅读提示:Methods部分:22例有相应组织病理标本,包括CB(16例)、肿瘤切除(4例)、肾切除(3例)。 |
| 免疫细胞化学 | 所用抗体(如CAIX、GATA3、p63)、染色方法和阳性判定标准 阅读提示:Figure 3及Discussion部分:ICC用于细胞块,标记物包括CAIX、GATA3、p63等。 |