建立ICH小鼠模型
模拟人类脑出血的病理状态。
采用立体定向注射自体动脉血至雄性CD-1小鼠右侧基底节建立ICH模型。
Orexin A alleviates neuroinflammation via OXR2/CaMKKβ/AMPK signaling pathway after ICH in mice
包含小鼠ICH模型、行为学测试、Western blot、ELISA、免疫荧光等多个独立证据层级,且包含功能验证和机制验证。
雄性CD-1小鼠ICH模型(自体动脉血立体定向注射至右侧基底节)
ICH模型:采用立体定向注射自体动脉血至右侧基底节,注射量30 μl,速度3 μl/min。 OXA给药:经鼻内给药,剂量为20、60、200 ng/μl,每只小鼠5 μl,于ICH诱导后1小时给予。 抑制剂/拮抗剂给药:STO-609、SB-334867、JNJ-10397049均腹腔注射,于ICH后1小时给予。 检测时间点:神经行为学测试在ICH后24小时、72小时及数周进行;Western blot和ELISA在24小时检测。 样本量:每组6或8只小鼠。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟人类脑出血的病理状态。
采用立体定向注射自体动脉血至雄性CD-1小鼠右侧基底节建立ICH模型。
评估OXA治疗是否能改善ICH后的神经功能。
通过神经行为学测试(改良Garcia测试、前肢放置测试、转角测试、足失误测试、旋转杆测试、Morris水迷宫)评估短期和长期神经功能。
评估OXA治疗是否能减轻血肿体积和脑水肿。
通过血红蛋白测定评估血肿体积,通过干湿重法评估脑含水量。
验证外源性OXA能否进入大脑并影响OXR1/OXR2的表达。
通过Western blot检测脑组织中OXA、OXR1、OXR2的蛋白表达。
揭示OXA是否通过CaMKKβ/AMPK通路介导抗炎作用。
使用CaMKKβ抑制剂STO-609,通过Western blot检测p-CaMKKβ、p-AMPK、p-NFκB、IL-1β、TNFα的表达。
确定OXA通过OXR1还是OXR2发挥抗炎作用。
使用OXR1拮抗剂SB-334867和OXR2拮抗剂JNJ-10397049,通过Western blot和ELISA检测通路蛋白和炎症因子。
量化OXA对促炎和抗炎细胞因子水平的影响。
通过ELISA检测IL-1β、TNFα、IL-6、IL-12、IL-4和IL-10的浓度。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 手术操作 | 立体定向注射系统 | -- | -- |
| 人工泪液软膏 | Rugby | -- | |
| 导管(MRE025,Micro-Renathane) | -- | -- | |
| 微量注射器(Hamilton 80500) | Hamilton | -- | |
| 泵系统 | Stoelting, Harvard Apparatus | -- | |
| 药物处理 | 重组OXA肽 | Sigma-Aldrich | O6012 |
| STO-609 | Selleck Chem | S8274 | |
| SB-334867 | Selleck Chem | S7585 | |
| JNJ-10397049 | Santa Cruz | sc-491320 | |
| 二甲基亚砜 | -- | -- | |
| 神经行为学测试 | 网格板 | CleverSys Inc. | -- |
| 旋转杆仪器 | Columbus Instruments | -- | |
| 追踪系统与分析软件 | Noldus Ethovision | -- | |
| 血肿体积测量 | Drabkin试剂 | Sigma-Aldrich | -- |
| 分光光度计(Thermo Scientific GENESYS 10S) | Thermo Scientific | -- | |
| Western blot | 抗OXA抗体 | Thermo Fisher | PA5-70436 |
| 抗OXR1抗体 | Thermo Fisher | PA5-77566 | |
| 抗OXR2抗体 | Thermo Fisher | PA5-77567 | |
| 抗p-CaMKKβ抗体 | Cell Signaling Technology | 12818 | |
| 抗CaMKKβ抗体 | Cell Signaling Technology | 16810 | |
| 抗p-AMPK抗体 | Cell Signaling Technology | 5759 | |
| 抗AMPK抗体 | Cell Signaling Technology | 5831 | |
| 抗p-NFκB抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| 抗IL-1β抗体 | Cell Signaling Technology | 63124 | |
| 抗TNFα抗体 | Cell Signaling Technology | 11948 | |
| 抗β-actin抗体 | Abcam | ab8226 | |
| 抗兔二抗 | Abcam | ab205718 | |
| 抗小鼠二抗 | Abcam | ab205719 | |
| ELISA | IL-1β ELISA试剂盒 | Abcam | ab197742 |
| TNFα ELISA试剂盒 | Abcam | ab208348 | |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Abcam | ab222503 | |
| IL-12 ELISA试剂盒 | Abcam | ab236717 | |
| IL-4 ELISA试剂盒 | Abcam | ab221833 | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | Abcam | ab255729 | |
| 免疫荧光 | 抗OXA抗体 | Abcam | ab120212 |
| 抗NeuN抗体 | Abcam | ab177487 | |
| 抗Iba-1抗体 | Abcam | ab178847 | |
| 抗GFAP抗体 | Abcam | ab7260 | |
| 抗兔二抗 | Abcam | ab150077 | |
| 抗小鼠二抗 | Abcam | ab150117 | |
| DAPI试剂 | Thermo Fisher | -- | |
| 荧光显微镜 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ICH模型建立 | 动物品系、性别、年龄、体重;自体动脉血注射量、速度、坐标;麻醉剂量。 阅读提示:Methods: ICH model establishment |
| 药物处理 | OXA给药剂量、途径、时间;STO-609、SB-334867、JNJ-10397049的剂量和溶剂。 阅读提示:Methods: Drug administration |
| 神经行为学测试 | 测试时间点、具体设备参数(rotarod转速、水迷宫池尺寸等)。 阅读提示:Methods: Neurobehavioral tests |
| 分子检测 | 组织取材时间、蛋白提取、抗体稀释比例、ELISA检测的细胞因子种类。 阅读提示:Methods: Western blot, ELISA |