测量基础自噬通量与UPS活性
评估不同遗传背景下人神经元的基础蛋白质降解活性并探究两者关系
使用47个ROSMAP iPSC来源的诱导神经元(iNs),通过氯喹处理测定LC3B-II积累以反映自噬通量,并利用荧光底物Suc-LLVY-amc测定蛋白酶体活性。
Genetic and proteomic analysis identifies BAG3 as an amyloid-responsive regulator of neuronal proteostasis
包含47株iPSC神经元的基础自噬和UPS活性分析、SILAC蛋白质周转、CRISPR-Cas9敲除BAG3的功能验证、Aβ处理及人脑组织的蛋白质组验证,涉及多层级证据。
ROSMAP队列人iPSC来源的诱导神经元(iNs) BAG3敲除的iPSC来源神经元 家族性AD突变(APPSwe/Swe, PSEN1M146V/M146V)iPSC来源神经元 人脑组织样本(角回,ROSMAP队列)
iPSC来源神经元的遗传背景(ROSMAP队列47株系) 自噬通量测定:氯喹(40 μM)处理24小时,LC3B-II积累 UPS活性测定:Suc-LLVY-amc荧光底物,20 μM BAG3敲除的CRISPR/Cas9编辑策略(gRNA序列及靶向外显子2) AD脑提取物处理条件:浓度1 mg/mL,1:8稀释,处理72小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估不同遗传背景下人神经元的基础蛋白质降解活性并探究两者关系
使用47个ROSMAP iPSC来源的诱导神经元(iNs),通过氯喹处理测定LC3B-II积累以反映自噬通量,并利用荧光底物Suc-LLVY-amc测定蛋白酶体活性。
研究不同降解活性背景下神经元整体蛋白质周转的动态变化
选取4个具有高/低UPS活性和高/低自噬通量的iN系,从分化第14天开始用重同位素标记的赖氨酸和精氨酸进行SILAC标记,并在标记后1、2、7、14、21天收集样本,通过质谱分析蛋白质周转。
验证SILAC鉴定的候选UPS底物(CAPZA1、CFL1)的降解是否依赖UPS
用蛋白质合成抑制剂环己酰亚胺(CHX)和蛋白酶体抑制剂硼替佐米处理iNs,通过Western blot检测CAPZA1和CFL1的蛋白水平变化。
识别对UPS和自噬抑制产生相反响应的蛋白质,特别是BAG3
对同一遗传背景的iNs分别进行硼替佐米或氯喹处理,通过TMT-MS定量蛋白质组学比较差异表达蛋白,并在8个ROSMAP iN系中用Western blot验证BAG3对硼替佐米的响应。
确定BAG3缺失对自噬通量、蛋白酶体活性及tau聚集的影响
在两种遗传背景(BR33和BR24)的iPSC中用CRISPR/Cas9编辑BAG3,获得WT和KO克隆,分化成神经元后检测自噬通量、蛋白酶体活性、总泛素化蛋白水平和tau蛋白形态。
检测家族性AD突变和Aβ暴露是否调节BAG3表达
使用携带APPSwe/Swe和PSEN1M146V/M146V突变的iNs及其同源对照,用AD脑提取物(含Aβ)处理iNs,并通过Western blot检测BAG3蛋白水平;通过Aβ免疫耗竭和RNA-seq分析确定Aβ对BAG3转录的调控作用。
验证BAG3表达在AD患者脑组织中是否上调并关联神经病理
对30例ROSMAP个体的角回脑组织进行序贯提取(TBS、SDS、尿素),对TBS提取物进行TMT-MS分析,并利用另一个大的尿素提取蛋白质组数据集分析BAG3与病理和认知评分的相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | StemFlex培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 基质胶 | Corning | 354230 | |
| 细胞分化 | 多西环素 | Sigma | 2 |
| 嘌呤霉素 | Gibco | 5 | |
| B27添加剂 | Life Technologies | -- | |
| 细胞培养 | 脑源性神经营养因子 | Peprotech | 10 |
| 胶质细胞源性神经营养因子 | Peprotech | 10 | |
| 睫状神经营养因子 | Peprotech | 10 | |
| 药物处理 | 硼替佐米 | -- | 179324-69-7 |
| 氯喹 | -- | 5648 | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | 89900 |
| 蛋白酶抑制剂 | Roche | -- | |
| 磷酸酶抑制剂 | Roche | -- | |
| Pierce BCA蛋白检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 | |
| 4X LI-COR上样缓冲液 | Fisher Scientific | NC9779096 | |
| Novex NuPAGE™ 4–12% Bis-Tris凝胶 | ThermoFisher | NP0336BOX | |
| NuPAGE™ 1X MOPS-SDS或MES-SDS电泳缓冲液 | ThermoFisher | NP0001 | |
| SeeBlue Plus2预染蛋白标准 | ThermoFisher | LC5925 | |
| Odyssey封闭缓冲液 | LI-COR | 927-50100 | |
| REVERT 700总蛋白染色 | LI-COR | 926-11011 | |
| 兔抗BAG3抗体 | Proteintech | 10599-1-AP | |
| 小鼠抗磷酸化tau抗体 (Ser202, Thr205) | Thermo Fisher Scientific | MN1020 | |
| 小鼠抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 兔抗TAU抗体 | Cell Signaling Technologies | 46687S | |
| 兔抗p Tau-214抗体 | Cell Signaling Technologies | 77348 | |
| 兔抗p Tau-404抗体 | Thermo Fisher Scientific | 44-758G | |
| 小鼠抗TAU抗体 | Thermo Fisher Scientific | AHB0042 | |
| 兔抗LC3B抗体 | Novus | NB100-2220 | |
| 兔抗PSMB5抗体 | Bethyl | A303-847A-M | |
| 小鼠抗泛素抗体 | Millipore | Mab1510-I-100UG | |
| 小鼠抗CAPZA1抗体 | Proteintech | 66066-1-Ig | |
| 兔抗CFL1抗体 | Cell Signaling Technologies | 5175 | |
| 兔抗β-肌动蛋白抗体 | Abcam | ab8227 | |
| 兔抗α-突触核蛋白抗体 | Abcam | ab138501 | |
| 兔抗生物素抗体 | Abcam | ab53494 | |
| DBCO-PEG4-生物素 | Tocris | 7480 | |
| 蛋白酶体活性检测 | Suc-LLVY-amc荧光底物 | -- | -- |
| 环氧霉素 | -- | 2 | |
| SILAC标记 | 赖氨酸+8 | Cambridge Isotopes | CNLM29-H-1 |
| 精氨酸+10 | Cambridge Isotopes | CNLM539-H1 | |
| 质谱样品制备 | 胰蛋白酶/Lys-c混合物 | Promega | V5073 |
| HyperSep C18柱 | Thermo Scientific | 60108-302 | |
| Pierce™高pH反相肽分级试剂盒 | Thermo Scientific | 84868 | |
| Pierce™ C18离心柱 | Thermo Scientific | 89852 | |
| LC-MS/MS | PepMap™ 100 C18 nanoViper™捕集柱 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| PepMap™ RSLC C18色谱柱 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Nanospray Flex™离子源 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Orbitrap Fusion质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 蛋白组学样品制备 | 尿素裂解缓冲液 | -- | -- |
| 赖氨酰内肽酶 | Wako | -- | |
| 胰蛋白酶 | Promega | -- | |
| Sep-Pak C18柱 | Waters | -- | |
| TMT标记 | TMTPro等压标签 | Thermofisher Scientific | A44520 |
| 羟胺 | Pierce | -- | |
| HLB板 | Waters | -- | |
| BEH色谱柱 | Water's | -- | |
| Vanquish超高效液相色谱系统 | Thermo | -- | |
| 细胞处理 | L-叠氮高丙氨酸 | Vector Laboratories | CCT-1066 |
| AD脑提取物 | -- | -- | |
| Aβ免疫耗竭 | 蛋白A琼脂糖珠 | -- | 50 |
| PD MiniTrap柱 | Cytiva | -- | |
| RNA提取 | PureLink RNA小提试剂盒 | Invitrogen | -- |
| ELISA | Aβ肽检测试剂盒1 (6E10) | MesoScale Discoveries | K15200E-2 |
| 脑提取物制备 | Slide-A-Lyzer透析卡 | Thermo Fisher | -- |
| Amicon Ultra离心过滤器 | EMD Millipore | -- | |
| 细胞培养 | BrainPhys培养基 | StemCell Technologies | -- |
| SM-1神经元添加剂 | StemCell Technologies | -- | |
| CRISPR/Cas9编辑 | pXPR-003载体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| iPSC分化 | iPSC系来源(ROSMAP队列)、分化方案(NGN2诱导)、细胞密度(95k/cm2、200k/cm2、50k/cm2)、培养基成分、细胞因子浓度(BDNF、GDNF、CNTF 10 ng/mL)、多西环素2 μg/mL、嘌呤霉素5 μg/mL 阅读提示:Methods: Differentiation of iPSCs to induced neurons (iNs) |
| 自噬通量检测 | 氯喹浓度(40 μM)、处理时间(24小时)、LC3B-II定量方法(Western blot)、对照处理(水) 阅读提示:Methods: Autophagic flux, Figure 1b |
| 蛋白酶体活性检测 | Suc-LLVY-amc浓度(20 μM)、反应缓冲液成分、荧光测量条件(激发380 nm,发射460 nm,37°C,2小时) 阅读提示:Methods: Proteasome activity assay |
| SILAC标记和蛋白质周转测量 | 重标记起始时间(D14)、收获时间点(D1, D2, D7, D14, D21)、细胞系(BR26, BR57, BR58, BR98)、质谱分析流程、数据分析阈值(FDR<1%) 阅读提示:Methods: SILAC labeling, Mass spectrometry analysis |
| BAG3敲除 | gRNA序列('GCAGCGATTCCGAACTGAGG')、靶向位点(BAG3外显子2)、电穿孔条件、克隆筛选方法(Sanger测序) 阅读提示:Methods: CRISPR/Cas9 editing to generate BAG3 WT, HET, and KO iPSCs |
| AD脑提取物处理 | 脑提取物制备方法(TBS提取)、处理浓度(1:8稀释)、处理时间(72小时)、培养基更换频率(每24小时) 阅读提示:Methods: TBS-soluble brain extract preparation and iN treatment |
| Aβ免疫耗竭 | 抗Aβ抗体(S97)或对照IgG浓度(45 µg/ml)、蛋白A琼脂糖珠体积(50 µl/ml)、免疫耗竭次数(3次)、缓冲液交换方法(PD MiniTrap) 阅读提示:Methods: Aβ immunodepletion of AD brain extract and iN treatment |
| 蛋白质组学 | TMT标记通道数(16)、质谱仪器(Orbitrap Fusion)、数据处理软件(Proteome Discoverer 2.4.1.15)、数据库版本(Uniprot 2020年8月)、FDR阈值(0.1%) 阅读提示:Methods: TMT-MS proteomics and data analysis |