ESPEC-SUIT:一种多功能且稳健的平台,用于识别和追踪癌症患者中的抗原特异性T细胞受体

ESPEC-SUIT: a versatile and robust platform to identify and track antigen-specific T cell receptors in patients with cancer

作者信息Katharina Lindner, Saskia R Stange, Julian Benedikt Hlawatsch, Moritz Hamberger, Tamara Boschert, Chin Leng Tan, Ingrid Hülsmeyer, Samira Moreen Sachse, Simone Jünger, Alexander Ernst, Olga Głatki, Sofiya Vinogradova, Lena Fleischhacker, Stefan B Eichmüller, Stefan Fröhling, Jessica C Hassel, Inka Zörnig, Yanhong Lyu, Zhiquin Huang, Dirk Jäger, Frank Momburg, Marten Meyer, Lukas Bunse, Edward William Green, Michael Platten, Isabel Poschke
PMID40983341
发布时间2025-09-21
DOI10.1136/jitc-2025-012216

实验完整度

该研究包含体外扩增培养、TCR功能验证、TCR测序、单细胞测序、体内追踪等多个独立证据层级,并明确进行了功能验证和机制验证,符合高水平实验完整度标准。

主要模型

外周血单个核细胞(PBMC) 胶质瘤患者 肿瘤浸润淋巴细胞(TIL)

重点核对

患者队列:32例癌症患者,包括29例胶质瘤患者和3例其他肿瘤患者,详细特征见在线补充表1 抗原刺激:使用共享新抗原(neo-1、neo-2)、患者个体新抗原、回忆抗原和对照抗原进行体外再刺激 扩增培养条件:PBMC在X-Vivo20培养基中,添加IL-2、IL-7、IL-15,从第4天开始半量换液,培养13-15天 TCR筛选标准:候选克隆需在抗原刺激培养中频率>10^-3,在无肽对照培养中<4×10^-4,且TCRseq数据下采样至10,000计数 TCR功能验证:通过电穿孔将TCR RNA转入健康供者T细胞,与肽脉冲的靶细胞共培养,检测CD107a和TNFα表达

摘要

背景:识别和表征抗原反应性T细胞受体(TCR)的方法代表了理解和利用癌症及其他患者T细胞反应的重要工具。当前方法受限于单个T细胞克隆的稀有性,且主要适用于监测主要组织相容性复合体(MHC)I类限制性和MHC II类限制性反应,因此不足以全面反映患者的整个抗原反应性TCR库。为了获得对多克隆、抗原特异性TCR库的广泛而深入的了解,我们开发了“表位特异性扩增培养及后续TCR鉴定”(ESPEC-SUIT)分析方法,以识别和追踪抗原特异性TCR。方法:用(疫苗靶向的)新抗原体外刺激外周血单个核细胞,通过细胞因子分泌实验验证,并通过TCRβ库测序(TCRseq)进行读out。候选抗原反应性克隆型通过相关抗原刺激培养中的特异性扩增来定义,随后进行TCR克隆,并在TCR转基因效应细胞与肽呈递靶细胞的共培养中进行验证。利用TCRseq信息,在纵向收集的血液样本和肿瘤组织的批量及单细胞库测序数据中追踪和表征候选及已验证的克隆型。结果:在32例癌症患者队列中,我们证明ESPEC-SUIT支持针对多种抗原的CD4+和CD8+ T细胞的强烈、稳健和可重复的扩增。TCRseq揭示了高度多克隆的新表位特异性T细胞反应,并可进一步表征其交叉反应性、亲和力或人类白细胞抗原(HLA)限制性。在10例患者的子队列中,我们从>2000个候选TCR中筛选出341个ESPEC-SUIT来源的TCR进行克隆和体外功能验证,并确认了超过75%的抗原反应性。我们在新抗原疫苗接种的胶质瘤患者中展示了这种TCR发现方法在下游分析中的实用性,发现血液中候选TCR频率的纵向变化与抗原特异性离体酶联免疫斑点(ELISpot)反应相呼应。此外,高达67%的候选TCR可在治疗中的脑肿瘤组织中检测到,并表现出与疫苗抗原确认特异性克隆型重叠的基因表达特征。结论:ESPEC-SUIT提供了对高度多克隆、抗原特异性T细胞反应的前所未有的洞察,并能够发现针对给定抗原的大量TCR。它代表了癌症患者肿瘤反应性T细胞反应研究的一种高效、经济且可扩展的框架。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何开发一种能够从癌症患者外周血中广泛、敏感地识别和追踪抗原特异性TCR的方法,以深入了解肿瘤反应性T细胞库的特征?
核心机制
ESPEC-SUIT通过体外抗原特异性再刺激实现T细胞克隆扩增,利用TCRβ库测序识别候选克隆,并通过功能验证确认其抗原特异性。
主要证据
研究在32例患者中验证了ESPEC-SUIT的稳健性,在10例患者中功能性验证了341个TCR,证实超过75%的候选TCR具有抗原反应性,并在胶质瘤患者中追踪到候选克隆在血液和肿瘤组织中的动态变化。
研究意义
ESPEC-SUIT为癌症患者肿瘤反应性T细胞反应的研究提供了一个高效、经济且可扩展的框架,能够发现大量抗原特异性TCR,有助于理解肿瘤免疫逃逸和改善免疫治疗。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者样本采集与外周血单个核细胞分离

获取用于扩增培养和后续分析的临床样本

从32例癌症患者(其中29例为胶质瘤患者)采集外周血(最多150 mL),通过密度梯度离心法分离PBMC,并冻存备用。同时收集肿瘤组织样本,部分用于后续分析。

2

表位特异性扩增培养(ESPEC)

扩增抗原特异性T细胞,使其达到可检测水平

将PBMC与抗原肽共培养,添加低剂量细胞因子(IL-2、IL-7、IL-15)支持T细胞扩增,培养13-15天后收获细胞。

3

T细胞反应性评估

验证扩增后T细胞对抗原的特异性反应

通过IFNγ ELISpot和流式细胞术(检测TNFα、IFNγ)评估扩增前后T细胞对特定抗原的反应性,以确认扩增效果和特异性。

4

TCRβ库测序(TCRseq)

鉴定扩增培养中富集的TCR克隆类型

对扩增后的T细胞、患者PBMC和肿瘤组织进行TCRβ库测序,通过生物信息学分析确定候选抗原反应性克隆型。

5

TCR克隆与体外功能验证

验证候选TCR是否确实识别抗原

对选定的候选TCR,通过单细胞V(D)J测序获取TCRαβ对,合成、克隆并转录为mRNA,电穿孔至健康供者T细胞中表达,与抗原肽脉冲的靶细胞共培养,检测CD107a和TNFα表达以判断反应性。

6

纵向追踪和肿瘤组织分析

评估候选TCR在患者体内随时间及在肿瘤组织中的存在和动态

利用TCRseq数据追踪候选TCR在患者多个时间点外周血中的频率变化,并分析肿瘤组织中是否存在这些候选TCR;对肿瘤浸润淋巴细胞进行单细胞RNA/V(D)J测序以探究其基因表达特征。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Biocoll分离液BiochromBS.L6115
Leucosep离心管Greiner Bio-One227290
X-Vivo20培养基Lonza04-448Q
胎牛血清Sigma-AldrichS0615
二甲亚砜Sigma-AldrichD2650-100ML
X-Vivo15培养基LonzaBE02-060Q
人IL-2NovartisCh-B.
人IL-7Miltenyi130-095-362
人IL-15Miltenyi130-095-764
抗人IFNγ抗体(1-D1K)Mabtech15
牛血清白蛋白Sigma-AldrichA3294-100G
葡萄球菌肠毒素BSigma-AldrichS4881-1mg
CMV-pp65Miltenyi130-093-435
AdV5 PeptivatorMiltenyi130-093-496
佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯MerckP8139-1
离子霉素Merck19657
ELISpot板Merck MilliporeMSIPS4W10
IFNγ-ALP-Flex试剂盒Mabtech3420-2A
免疫斑点分析仪Cellular Technology Ltd.--
DNeasy Blood and Tissue KitQiagen69504
QIAGEN AllPrep DNA/RNA Mini KitQiagen69504
Agilent 4150 TapeStationAgilent--
高灵敏度RNA检测试剂条Agilent5067-5579
hsTCRBv4b试剂盒Adaptive Biotechnologies--
DriverMap-AIR TCR-BCR分析试剂盒CelllectaDMAIR-HTBR-24
苯并酚酶speed BioSystemsYCP1200-500KU
哈希抗体BiolegendTotalSeq-C0251-C0258
10x Genomics 5' RNA和V(D)J试剂盒10x Genomics--
NovaSeq6000测序平台Illumina--
NEBridge Golden Gate组装试剂盒New England BiolabsE1602S
T7-mScript标准mRNA生产系统CELLSCRIPTC-MSC100625
P3溶液Lonza--
Lonza 4D核转染仪Lonza--
TexMACS培养基Miltenyi130-097-196
抗CD107a抗体(H4A3)BD Biosciences561343
GolgiPlugBD Biosciences555029
GolgiStopBD Biosciences554724
人AB血清Sigma-AldrichH4522-100ML
TransAct微珠Miltenyi130-111-160
CD14微珠Miltenyi130-050-201
白细胞介素-4Miltenyi130-093-921
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子PeproTech300-03-100
人CD4/CD8微珠Miltenyi130-45-101/201
CEFX记忆抗原池JPTPM-CEFX-1

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
样本采集与处理
患者类型、诊断、年龄、性别;血液样本量(最多150 mL);肿瘤组织样本获取方式
阅读提示:Methods 采样和患者同意部分;在线补充表1
外周血单个核细胞分离
密度梯度离心使用Biocoll分离液和Leucosep管;冻存液组成(Medium A和B)
阅读提示:Methods 采样和患者同意部分
表位特异性扩增培养(ESPEC)
PBMC浓度(2×10^6/mL);肽浓度(4 µg/mL);细胞因子浓度(IL-2 50 IU/mL、IL-7 25 ng/mL、IL-15 25 ng/mL);培养时间(13-15天);加液和换液时间(第4、7、9、11天)
阅读提示:Methods 表位特异性扩增培养部分
IFNγ ELISpot
细胞数(ex vivo 3-4×10^5/孔,post-ESPEC 2500-125000/孔);肽浓度(10-20 µg/mL);培养时间(44小时);阳性对照(SEB、CMV-pp65、AdV5、PMA/离子霉素);阳性标准(>30 SFU)
阅读提示:Methods IFNγ ELISpot部分
TCRβ深度测序
DNA/RNA提取试剂盒(DNeasy, AllPrep);测序平台(MiSeq、NextSeq550);测序试剂盒(hsTCRBv4b、DriverMap-AIR);输入量(DNA 252 ng或1.3-3.5 µg,RNA 100-1000 ng);数据下采样(10,000计数)
阅读提示:Methods TCRβ深度测序部分
单细胞测序
细胞数(12000或40000);哈希抗体稀释度(1:2500);试剂盒版本(10x 5' RNA和V(D)J v1.0-1.1);测序平台(NovaSeq6000)
阅读提示:Methods 单细胞测序部分
TCR筛选与克隆
候选TCR选择标准(>10^-3在刺激培养,<4×10^-4在对照培养);TCRαβ配对来源;克隆方法(Golden Gate Assembly);mRNA合成系统(T7-mScript)
阅读提示:Methods TCR选择与克隆部分
TCR表达与功能验证
电穿孔条件(2×10^6细胞,750 ng mRNA,程序EO-115);靶细胞类型(自身B-LCL或树突状细胞);肽浓度(10^-5 M);共培养时间;检测指标(CD107a和TNFα);阳性标准(信号-背景>背景+2×SD)
阅读提示:Methods TCR表达和体外功能验证部分;图3C