患者样本采集与外周血单个核细胞分离
获取用于扩增培养和后续分析的临床样本
从32例癌症患者(其中29例为胶质瘤患者)采集外周血(最多150 mL),通过密度梯度离心法分离PBMC,并冻存备用。同时收集肿瘤组织样本,部分用于后续分析。
ESPEC-SUIT: a versatile and robust platform to identify and track antigen-specific T cell receptors in patients with cancer
该研究包含体外扩增培养、TCR功能验证、TCR测序、单细胞测序、体内追踪等多个独立证据层级,并明确进行了功能验证和机制验证,符合高水平实验完整度标准。
外周血单个核细胞(PBMC) 胶质瘤患者 肿瘤浸润淋巴细胞(TIL)
患者队列:32例癌症患者,包括29例胶质瘤患者和3例其他肿瘤患者,详细特征见在线补充表1 抗原刺激:使用共享新抗原(neo-1、neo-2)、患者个体新抗原、回忆抗原和对照抗原进行体外再刺激 扩增培养条件:PBMC在X-Vivo20培养基中,添加IL-2、IL-7、IL-15,从第4天开始半量换液,培养13-15天 TCR筛选标准:候选克隆需在抗原刺激培养中频率>10^-3,在无肽对照培养中<4×10^-4,且TCRseq数据下采样至10,000计数 TCR功能验证:通过电穿孔将TCR RNA转入健康供者T细胞,与肽脉冲的靶细胞共培养,检测CD107a和TNFα表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取用于扩增培养和后续分析的临床样本
从32例癌症患者(其中29例为胶质瘤患者)采集外周血(最多150 mL),通过密度梯度离心法分离PBMC,并冻存备用。同时收集肿瘤组织样本,部分用于后续分析。
扩增抗原特异性T细胞,使其达到可检测水平
将PBMC与抗原肽共培养,添加低剂量细胞因子(IL-2、IL-7、IL-15)支持T细胞扩增,培养13-15天后收获细胞。
验证扩增后T细胞对抗原的特异性反应
通过IFNγ ELISpot和流式细胞术(检测TNFα、IFNγ)评估扩增前后T细胞对特定抗原的反应性,以确认扩增效果和特异性。
鉴定扩增培养中富集的TCR克隆类型
对扩增后的T细胞、患者PBMC和肿瘤组织进行TCRβ库测序,通过生物信息学分析确定候选抗原反应性克隆型。
验证候选TCR是否确实识别抗原
对选定的候选TCR,通过单细胞V(D)J测序获取TCRαβ对,合成、克隆并转录为mRNA,电穿孔至健康供者T细胞中表达,与抗原肽脉冲的靶细胞共培养,检测CD107a和TNFα表达以判断反应性。
评估候选TCR在患者体内随时间及在肿瘤组织中的存在和动态
利用TCRseq数据追踪候选TCR在患者多个时间点外周血中的频率变化,并分析肿瘤组织中是否存在这些候选TCR;对肿瘤浸润淋巴细胞进行单细胞RNA/V(D)J测序以探究其基因表达特征。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| PBMC分离 | Biocoll分离液 | Biochrom | BS.L6115 |
| Leucosep离心管 | Greiner Bio-One | 227290 | |
| 细胞培养 | X-Vivo20培养基 | Lonza | 04-448Q |
| 胎牛血清 | Sigma-Aldrich | S0615 | |
| 二甲亚砜 | Sigma-Aldrich | D2650-100ML | |
| X-Vivo15培养基 | Lonza | BE02-060Q | |
| T细胞扩增培养 | 人IL-2 | Novartis | Ch-B. |
| 人IL-7 | Miltenyi | 130-095-362 | |
| 人IL-15 | Miltenyi | 130-095-764 | |
| ELISpot | 抗人IFNγ抗体(1-D1K) | Mabtech | 15 |
| 牛血清白蛋白 | Sigma-Aldrich | A3294-100G | |
| 葡萄球菌肠毒素B | Sigma-Aldrich | S4881-1mg | |
| CMV-pp65 | Miltenyi | 130-093-435 | |
| AdV5 Peptivator | Miltenyi | 130-093-496 | |
| 佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯 | Merck | P8139-1 | |
| 离子霉素 | Merck | 19657 | |
| ELISpot板 | Merck Millipore | MSIPS4W10 | |
| IFNγ-ALP-Flex试剂盒 | Mabtech | 3420-2A | |
| 免疫斑点分析仪 | Cellular Technology Ltd. | -- | |
| TCRβ深度测序 | DNeasy Blood and Tissue Kit | Qiagen | 69504 |
| QIAGEN AllPrep DNA/RNA Mini Kit | Qiagen | 69504 | |
| Agilent 4150 TapeStation | Agilent | -- | |
| 高灵敏度RNA检测试剂条 | Agilent | 5067-5579 | |
| hsTCRBv4b试剂盒 | Adaptive Biotechnologies | -- | |
| DriverMap-AIR TCR-BCR分析试剂盒 | Celllecta | DMAIR-HTBR-24 | |
| 单细胞测序 | 苯并酚酶 | speed BioSystems | YCP1200-500KU |
| 哈希抗体 | Biolegend | TotalSeq-C0251-C0258 | |
| 10x Genomics 5' RNA和V(D)J试剂盒 | 10x Genomics | -- | |
| NovaSeq6000测序平台 | Illumina | -- | |
| TCR克隆 | NEBridge Golden Gate组装试剂盒 | New England Biolabs | E1602S |
| T7-mScript标准mRNA生产系统 | CELLSCRIPT | C-MSC100625 | |
| TCR功能验证 | P3溶液 | Lonza | -- |
| Lonza 4D核转染仪 | Lonza | -- | |
| TexMACS培养基 | Miltenyi | 130-097-196 | |
| 抗CD107a抗体(H4A3) | BD Biosciences | 561343 | |
| GolgiPlug | BD Biosciences | 555029 | |
| GolgiStop | BD Biosciences | 554724 | |
| 细胞培养 | 人AB血清 | Sigma-Aldrich | H4522-100ML |
| TCR功能验证 | TransAct微珠 | Miltenyi | 130-111-160 |
| CD14微珠 | Miltenyi | 130-050-201 | |
| 白细胞介素-4 | Miltenyi | 130-093-921 | |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | PeproTech | 300-03-100 | |
| T细胞富集 | 人CD4/CD8微珠 | Miltenyi | 130-45-101/201 |
| 扩增培养 | CEFX记忆抗原池 | JPT | PM-CEFX-1 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本采集与处理 | 患者类型、诊断、年龄、性别;血液样本量(最多150 mL);肿瘤组织样本获取方式 阅读提示:Methods 采样和患者同意部分;在线补充表1 |
| 外周血单个核细胞分离 | 密度梯度离心使用Biocoll分离液和Leucosep管;冻存液组成(Medium A和B) 阅读提示:Methods 采样和患者同意部分 |
| 表位特异性扩增培养(ESPEC) | PBMC浓度(2×10^6/mL);肽浓度(4 µg/mL);细胞因子浓度(IL-2 50 IU/mL、IL-7 25 ng/mL、IL-15 25 ng/mL);培养时间(13-15天);加液和换液时间(第4、7、9、11天) 阅读提示:Methods 表位特异性扩增培养部分 |
| IFNγ ELISpot | 细胞数(ex vivo 3-4×10^5/孔,post-ESPEC 2500-125000/孔);肽浓度(10-20 µg/mL);培养时间(44小时);阳性对照(SEB、CMV-pp65、AdV5、PMA/离子霉素);阳性标准(>30 SFU) 阅读提示:Methods IFNγ ELISpot部分 |
| TCRβ深度测序 | DNA/RNA提取试剂盒(DNeasy, AllPrep);测序平台(MiSeq、NextSeq550);测序试剂盒(hsTCRBv4b、DriverMap-AIR);输入量(DNA 252 ng或1.3-3.5 µg,RNA 100-1000 ng);数据下采样(10,000计数) 阅读提示:Methods TCRβ深度测序部分 |
| 单细胞测序 | 细胞数(12000或40000);哈希抗体稀释度(1:2500);试剂盒版本(10x 5' RNA和V(D)J v1.0-1.1);测序平台(NovaSeq6000) 阅读提示:Methods 单细胞测序部分 |
| TCR筛选与克隆 | 候选TCR选择标准(>10^-3在刺激培养,<4×10^-4在对照培养);TCRαβ配对来源;克隆方法(Golden Gate Assembly);mRNA合成系统(T7-mScript) 阅读提示:Methods TCR选择与克隆部分 |
| TCR表达与功能验证 | 电穿孔条件(2×10^6细胞,750 ng mRNA,程序EO-115);靶细胞类型(自身B-LCL或树突状细胞);肽浓度(10^-5 M);共培养时间;检测指标(CD107a和TNFα);阳性标准(信号-背景>背景+2×SD) 阅读提示:Methods TCR表达和体外功能验证部分;图3C |