细胞活力检测，CCK8还是MTT？

在细胞生物学研究中，准确评估细胞活力是了解细胞增殖、代谢状态以及药物作用效果的关键环节。细胞活力检测方法众多，其中CCK-8和MTT是两种广泛应用的比色法检测手段。它们通过检测细胞代谢活性来反映细胞的生存状态，那么，我们究竟该如何选择呢？下文将对这两种检测方法作出比较。

原理PK
CCK-8：是WST-8在电子耦合载体1-Methoxy PMS存在的情况下被线粒体内的脱氢酶还原成水溶性的橙黄色甲臜产物（formazan）。通过酶标仪测量细胞液的OD值便可检测出待测细胞样品的活性。

CCK-8细胞活性检测原理图

MTT: 是利用活细胞的线粒体脱氢酶在代谢过程中将黄色的可溶性四唑盐MTT还原为不溶于水的蓝紫色产物-甲臜(Formazan)晶体。使用合适的溶解液如DM SO溶解沉积在细胞中的甲臜晶体，通过酶标仪测量细胞液的OD值便可检测出待测细胞样品的活性。

MTT胞活性检测原理图

操作流程PK

CCK-8和MTT操作流程图

使用MTT法进行活力检测时，生成的甲臜产物需要用DMSO溶解，颗粒不完全溶解或者在吸取上清操作过程中带走部分细胞等情况，往往会导致实验结果稳定性查、重复性差等一系列问题，有的期刊可能质疑数据的正确性。

CCK-8生成的甲臜产物是水溶性的，可直接测定OD值，不存在不完全溶解和产物被带走的情况，可以完全避免MTT法在操作上带来的误差。

 

灵敏度PK

CCK-8使用的WST-8染料被还原后生成水溶性橙黄色甲臜，其线性范围更宽，可检测更低细胞密度（如100个细胞/孔），尤其适合低细胞数实验。

MTT生成的非水溶性蓝紫色甲臜需DMSO溶解，部分结晶可能丢失，导致信号减弱，灵敏度相对较低。

细胞毒性PK

CCK-8：细胞毒性较低，对细胞的生理状态影响较小，适合长时间培养和连续监测。

MTT：可能对细胞产生一定的毒性，尤其是在长时间培养或高浓度使用时，可能影响细胞的正常生长和代谢。

综上所述，CCK8检测法灵敏度高、检测快速以及操作简便，且细胞毒性较低，是更优的选择。

附：CCK8细胞活力检测的经验

1.起始细胞接种数量：以使用标准96孔板为例，贴壁细胞的最小接种量至少为1,000 个/孔 (100 μL 培养基)。如果检测白细胞，灵敏度相对较低，因此推荐接种量不低于2,500 个/孔 (100 μL 培养基)。

2.CCK-8加入剂量：一般建议为按培养体系的10%添加，添加过程中应避免产生气泡。

3.细胞孵育时间：孵育时间一般为1-4小时，一般悬浮细胞孵育的时间要长于贴壁细胞，由于CCK-8的OD值处在1.0左右是比较好的检测结果，建议实验者可以每隔0.5h测定一次OD值，以摸索出最佳孵育时间。

4.检测波长：如果没有450 nm的滤光片，可以使用吸光度在430-490 nm之间的滤光片，但是450 nm滤光片的检测灵敏度高。

5.CCK-8对细胞的毒性：CCK-8毒性非常低，检测完后相同的细胞可以继续进行其它细胞增殖检测，如结晶紫染色法、中性红染色法或DNA荧光染色法等。