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452 人阅读发布时间:2025-05-28 09:03
A2780+GFP人卵巢癌细胞系是在经典卵巢癌细胞系A2780基础上,通过基因工程手段(如慢病毒转染)稳定表达绿色荧光蛋白(GFP)的肿瘤模型。GFP标记使其在荧光显微镜或活体成像中可视化,广泛应用于肿瘤生物学研究、药物筛选及转移机制分析。
快速解冻:从液氮中取出冻存管,立即置于37℃水浴中摇晃至完全融化(约1-2分钟)。
离心去冻存液:将细胞悬液转移至含5mL预温培养基(如RPMI-1640+10% FBS)的离心管,1000rpm离心5分钟,弃上清。
重悬接种:用新鲜培养基重悬细胞,接种于培养瓶,置于37℃、5% CO₂培养箱。
注意:避免反复冻融,复苏后24小时内减少晃动以助贴壁。
培养基:RPMI-1640基础培养基,添加10%胎牛血清(FBS)、1%双抗(青霉素/链霉素)。
传代步骤:
吸弃旧培养基,PBS轻柔冲洗。
加入0.25%胰酶-EDTA,37℃消化1-3分钟(显微镜下观察细胞回缩)。
加入含血清培养基终止消化,吹打成单细胞悬液,按1:3至1:5比例传代。
换液频率:每2-3天更换培养基,密度达80-90%时传代。
无菌操作:超净台紫外线消毒30分钟,试剂分装避免污染。
GFP稳定性:定期用荧光显微镜检测GFP表达,传代时添加筛选抗生素(如G418,浓度需预实验确定)。
环境控制:CO₂浓度稳定(5%)、湿度>90%,避免温度波动。
细胞状态监测:贴壁均匀性、GFP荧光强度、增殖速度异常时及时排查。
生长缓慢:
检查血清批次活性,确保FBS无失活;
调整接种密度(建议2-5×10⁴ cells/cm²);
排查支原体污染(PCR检测)。
GFP信号减弱:
加入筛选压力(如G418);
避免长期曝光,减少光漂白。
污染预防:
定期消毒培养箱,使用支原体清除剂(如Plasmocin);
分装试剂,避免多人共用同一批次。
物理隔离:独立操作区域,专用移液器。
试剂检测:新批次血清/培养基需无菌试验。
定期监测:每月用Hoechst 33342染色检测支原体。
冻存液配制:90% FBS + 10% DMSO,现用现配。
步骤:
对数生长期细胞消化后离心,重悬于冻存液(密度1×10⁶/mL);
分装至冻存管,程序降温:4℃ 30min → -20℃ 2h → -80℃过夜 → 液氮长期保存。
复苏存活率:>80%为合格,需定期复苏检测。
STR分型:通过短串联重复序列分析确认细胞来源。
GFP验证:荧光显微镜观察(激发波长488nm)或流式细胞术检测表达率(>95%为佳)。
功能验证:化疗药物敏感性测试(如顺铂IC₅₀值)与亲本A2780对比。
抗肿瘤药物筛选:GFP标记便于高通量评估药物对细胞增殖/凋亡的影响。
肿瘤转移研究:活体成像追踪癌细胞在动物模型中的迁移与定植。
基因功能分析:结合CRISPR/Cas9技术研究卵巢癌相关基因。
免疫治疗评估:与免疫细胞共培养,观察杀伤效果。
A2780+GFP细胞系是卵巢癌研究的强效工具,但需严格把控培养条件与污染防控。定期备份冻存、监测GFP稳定性是长期实验成功的关键。