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免疫组化实验操作指南
发布时间：2024-03-28 16:08 点击次数：
免疫组化实验操作指南
该免疫組化实验方法仅供参考，由于每个实验使用的试剂不同，并且涉及不同的物种，组织类型及实验应用，实验人员设计应根据具体情况设计实验步骤和改良。
所需试剂
丙酮。
乙醇，无水变性的，组织学分级(100% 和 95%)。
蒸馏水。
苏mu精。
二jia苯。
10X TBS：制备1升10X TBS：24.2g Tris base，80g NaCl；用HCl (使用1X) 将pH调至 7.6 。
洗涤液TBS/T：1X TBS，0.1% Tween-20：制备1升需将100ml 的10X TBS加入到900ml双蒸馏水中。加入1ml Tween 20 然后混合。
10 mM柠檬酸钠缓冲液：制备1升需将2.94g 柠檬酸钠加入到1升的蒸馏水中。将pH调至 6.0。
3% 过氧化氢：制备需将10ml 30% H2O2 加入到90ml 蒸馏水中。
封闭液：5%马血清或山羊血清溶于TBS。
ABC 试剂：在使用前30分钟根据制造商说明制备。
DAB 试剂：根据制造商说明制备。
组织制备
A. 新鲜冷冻切片
组织制备
在液氮中将组织切成小块 (5mm x 5mm x 3 mm)。
转移到恒冷箱切片机中, 切成5~30μm薄的切片，将切片转移至带正电荷的载玻片上 (poly-L-lysine 包被的)。
室温下干燥切片 (若当天染色则干燥1~2小时，直至完全干燥)。注意：彻底干燥才能保证组织恰当地粘附在切片上。
固定方法
可用的固定方法有很多种，应遵循产品说明书上指定的方法或找到适宜样品的最佳方案。
冷丙酮：-20°C处理10分钟。自然干燥。
甲醇：-20°C处理10分钟。
10% 中性甲quan溶液：室温下10分钟。
3% 甲醛：室温下15分钟。
3% 甲醛/甲醇：室温下15分钟，然后用甲醇 -20°C处理 5 分钟 (中间不要漂洗)。
用PBS （pH 7.4 含1% Tween 20）漂洗切片3次，每次5分钟。
B. 固定的冷冻组织切片
使组织充满固定剂或将组织浸入到固定剂中一段时间。最常用的固定剂是4% 多聚甲醛。
将组织浸没于冻存保护液（其中含有含10~30%蔗糖的PBS）中。当组织沉入溶液中后冻存保护就完成了。
从冻存保护液中取出组织，保存于 -70°C 直到切片。
将组织从 -70°C 冰箱取出，在-20°C平衡15分钟然后再切片。-20°C平衡帮助避免切片时的断裂。
用恒冷箱切片机将组织切成 10~15um 的切片，收集切片置于载玻片上。通常每个载玻片可以放置3片切片，留出足够间距。
充分干燥切片。可使用自然风干或切片加热器，通常需要过夜或在40~50°C下至少干燥2~3小时。
制好的切片可以干燥保存在 -70°C 直至染色。在复水染色前要先平衡至室温并适当干燥。
C. 石蜡包埋切片
脱蜡和水化切片
二jia苯：换 2~3 次，每次5分钟。
100% 纯乙醇：换2次，每次3分钟。
95% 乙醇：换2次，每次3分钟。
80% 乙醇：3分钟。
50% 乙醇：3分钟。
蒸馏水，PBS，或 Tris buffer：换2次，每次3分钟。
注意：一旦组织切片复水，不要使之干透。用吸水纸吸干组织切片周围。用钻石划针，免疫組化笔，陶瓷记号笔，或指甲油在载玻片上将切片圈起来。这个圈可以在接下来的孵育过程中使溶液留存于切片上。
抗原修复
很多抗原的可视性可以通过抗原修复来提高，抗原修复可以打破福尔马林固定时形成的蛋白质交联，从而使被掩藏的抗原显现出来。抗原修复技术包括不同时间长度的加热或者利用蛋白酶来做酶消化，例如蛋白酶K，胰蛋白酶或胃蛋白酶。
加热的方法通常会用到微波炉，高压锅，蒸箱或水浴。将样品在接近100°C高温加热20分钟后再冷却同等的时间。最常用的抗原修复液有 a) 柠檬酸盐缓冲剂，pH 6.0， b) Tris-EDTA，pH 9.0 和 c) EDTA, pH 8.0。
如需要可用柠檬酸盐缓冲剂做抗原修复：
柠檬酸盐缓冲剂配方：
10mM 柠檬酸钠,0.05% Tween-20,pH 6.0 或
10mM 柠檬酸,0.05% Tween-20,pH 6.0
将含有柠檬酸钠或柠檬酸盐缓冲剂的染色盘放到蒸箱或者水浴中，预热到95~100 °C。
将切片浸没于染色盘中。盖子虚掩，孵育20~40 分钟 (研究者需自己决定最佳的孵育时间)。
关掉蒸箱或水浴，将染色盘置于室温下，让切片冷却20分钟。
在TBS-Tween-20中漂洗切片2次，每次2分钟。
开始封闭步骤。
过氧化氢孵育
阻断内源性过氧化物酶 (如需要):
将切片浸入到0.3~3% H2O2 和100% 甲醇中，室温下10~30 分钟。
在蒸馏水中漂洗切片，换2次，每次5分钟。
免疫组化实验方案
封闭步骤
用3~10% 来自二抗宿主物种的正常血清孵育切片30分钟，以阻断非特异的抗体结合。
移去封闭液。
一抗孵育
*所有步骤需在湿润的环境中进行。
在封闭液中稀释一抗。如果没有建议的稀释度，从 1:10, 1:100 和 1:1000开始。
4°C 孵育过夜。
移去抗体溶液。用PBS，pH 7.4 洗涤3次，每次5分钟。
如果一抗是HRP-标记的，直接开始显色步骤。
二抗孵育
根据建议的稀释度在封闭液中稀释生物素-标记的二抗。室温下孵育 30~60 分钟。
移去二抗溶液。在洗涤液中清洗3次，每次5分钟。
显色
向每个切片中加入链霉亲和素-辣根过氧化物酶试剂，室温下孵育30分钟。
移去 ABC 试剂。用洗涤液清洗切片3次，每次5分钟。
在湿润的环境下用 DAB 溶液彻底覆盖切片。室温下孵育 5~15 分钟。或者，在显微镜下观察切片来决定最佳的不溶沉淀物颜色深度。
一旦显色，用蒸馏水小心冲洗以终止反应。
如需要可以用苏mu精和曙红对组织进行复染色。
用蒸馏水清洗切片。
复水以及加盖玻片
样品复水：使用一系列不同浓度的甲醇或乙醇- 50% (2 x 5 min)，75% (2 x 5 min)， 最后 100% (2 x 5 min)。
用二jia苯重复上述步骤，孵育切片两次，每次10秒钟。
使切片自然干燥。
用合适的固定介质固定好盖玻片。
