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- 博尔森/BIOESN
- 中国/上海
- BES-R2211
- 2026年06月16日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
20
- 细胞类型：
见详情说明
- 品系：
见详情说明
- 组织来源：
见详情说明
- 相关疾病：
见详情说明
- 物种来源：
大鼠
- 免疫类型：
见详情说明
- 细胞形态：
贴壁/悬浮
- 器官来源：
见详情说明
- 运输方式：
常温/干冰运输
- 年限：
见详情说明
- 生长状态：
优良
- 规格：
5×105cells/T25培养瓶
一、从液氮容器中取出原代细胞冻存管后，立即将细胞冻存管直接浸入37℃水浴中，在1－2分钟内摇动细胞冻存管至冻存的细胞融化。
二、用75％酒精消毒细胞冻存管后，小心打开盖子，用吸管吸出细胞悬浮液，接种到细胞培养瓶中，5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养。
三、12小时后，更换一次原代细胞培养液（全部液体），继续在5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养 。
注意事项
一、将冻存管从液氮容器中取出时，要做好防护工作，以免冻伤。
二、取冻存管后立即放入37oC水浴中，缩短解冻时间。
三、复苏最好用新配制的原代细胞培养体系。
原代细胞传代基本技术：
一、选用原代细胞生长状态好（90－95％），生长数量大于5×105进行传代。
二、吸除原代细胞培养液。用含双抗的1×PBS（pH7.4）清洗细胞培养瓶2次。
三、3ml细胞消化液加入细胞培养瓶，轻轻摇动，使细胞消化液覆细胞培养瓶底。
四、细胞培养瓶置于5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养2分钟后，在显微镜下观察原代细胞的消化状态。（平滑肌细胞建议只消化30s）
请记住：如贴壁细胞逐渐趋于圆形、部分悬浮后，用手指轻轻拍打细胞培养侧部至大部分贴壁细胞悬浮，加入3ml血清终止液，终止细胞消化。每种原代细胞的消化时间是有差异的。
五、吹打培养瓶中悬浮细胞若干次，再吸出细胞悬浮液，转入15ml离心管中，1000rpm离心5分钟。
六、弃离心管中液体，加入原代细胞培养液重悬细胞。细胞计数，确定细胞数量。
七、细胞分瓶后，加入适量原代细胞培养液至细胞培养瓶中，置于5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养24小时。
原代细胞冻存基本技术：
一、选用原代细胞生长状态好（90－95％），生长数量大于5×105进行冻存。
二、原代细胞冻存24小时，须换液新鲜原代细胞培养液一次。
三、贴壁的原代细胞需常规用0.25％胰酶消化，将消化后的细胞悬液收集至细胞离心管中。
四、细胞离心管在1000rpm下离心5分钟，小心弃清液。
五、将细胞冻存液加入细胞离心管中，悬浮细胞。细胞计数调整至5×105/ml。
六、将悬浮细胞放置细胞冻存管中。密封细胞冻存管。 标明细胞种类和冻存日期。
请记住：封口一定要严，否则复苏时易出现爆裂。
请按下列顺序降温保存原代细胞：室温→4℃（60 分钟）→ 冰箱冷冻室（60 分钟）→ 超低温冰箱（－80℃过夜）→ 液氮。
原代细胞冻存液常用配方：50%完全原代细胞培养液（不含有血清、添加剂、双抗）+ 40%胎牛血清 + 10%DMSO
原代细胞免疫荧光鉴定：
一、原代培养的细胞用 4%的多巨甲醛，室温固15 min，0.1% Triton-X-100 透膜 10 min，PBS 清洗 3 遍，每5 min，
二、山羊血清室温封闭45 min，一抗 Insulin，兔多抗，使用浓度 1 ∶ 50；Glucagon 抗体，鼠单抗，使用浓度 1 ∶ 200；
Pancreatic Polypeptide（pp）抗体，兔多抗，使用浓度1∶200，4 ℃孵育过夜，PBS 清洗 3 遍，每次 5 min，
三、加入相应的二抗 Alexa Flour 594 （山羊抗兔）或FITC（山羊抗小鼠），室温避光孵育 45 min，PBS
清洗 3 遍，每次 5 min，
四、DAPI 复染核，PBS 清洗 3遍，每次 5 min，普通荧光显微镜下观察并照相.
五、实验结果：
Insulin（200X）：图中红色荧光为Insulin阳性，阳性率＞90%，即：细胞纯度＞90%
原代细胞培养客户须知：
一、请客户收到本公司原代细胞产品后，立即对物品包装、细胞培养瓶等拍照，如有疑问或问题，须在24小时内通知本公司，提供照片和书面说明。
客户收到非冻存原代细胞后，请将原装的原代细胞瓶放入细胞培养箱内培养，4-12小时后再使用。75ml培养液含添加剂，血清及双抗，可吸出70ml左右直接使用，无需过滤。注意观察细胞情况，待贴壁率达到90%以上再按传代说明操作。
二、请客户使用T25细胞瓶传代，一瓶传二瓶。
三、谨记：培养原代细胞前三天，需对原代细胞生长状态进行拍照并注明和标记时间。若原代细胞培养生长存在质量问题，需向本公司提供原代细胞培养生长的照片和书面说明。
四、请客户使用原代细胞第3代以内。原代细胞培养传代过多，可能造成原代细胞的质量问题。
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文献和实验胰腺移植是目前临床上有效治疗I型糖尿病，挽救II型糖尿病晚期伴肾功能不全的外科手段，因此，胰腺移植一直受到广泛的关注，至今围绕着胰腺移植，仍有许多问题需要解决，这些问题的基础研究都需要在合适的动物模型上进行，其中大鼠因为其成本低，来源易，免疫系统与人类相似等优点，是目前器官移植领域流行的实验动物之一。但是大鼠胰腺移植模型的建立是一个难度很大的实验外科技术，操作复杂，成功率低。因此，需要建立一种比较规范，操作简便，模型稳定且成功率高的胰腺移植模型的方法，以利于进行胰腺移植的基础研究。一、 手术
在大鼠腹部正中行纵行切口，2－3cm即可。胰腺是散在的，不是一个完整的器官。在胃，肝脏，小肠之间，如下图所示的淡黄色偏白的组织，你只能一点一点把 它取下来，注意和脂肪细胞区别，脂肪细胞和它很像，但是仔细看，胰腺每个小团块都有分叶，就是和胰腺病理一样的花纹，但是，脂肪细胞就没有，而是一团淡白色的组织。 进针的地方就是这张图我用箭头指向的那个点。有个找位置的窍门，轻轻捏起十二指肠，展开胰腺，对着灯光，隐约可以看到有一条细细的透明的管道从十二指肠一 直延伸到胰腺内部，你这个管子
flybaker：请教有关胰腺石蜡切片制作方法的问题按照普通石蜡切片的制作流程做出的大鼠胰腺组织切片，能被染上的细胞很少，而且细胞间的空隙很大。我自己分析可能是由于胰腺厚薄不均，导致透明时间没掌握好，透明过度组织变脆。再加上胰腺形状不规则，切片时没切到整个面。不知道有没有人做过胰腺的石蜡切片，和普通组织的石蜡切片制作方法相比有没有什么需要特别注意的？？丁香园网友zgxsea认为：是正常的大鼠胰腺组织吗？出血坏死型的胰腺组织，细胞结构消失，只剩骨架纤维，染不上是正常现象．我们做过大鼠胰腺
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