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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 现货状态:
现货
- 规格:
96支/盒
盒装10ul加长电泳点样吸头


产品编号
BE6891
规格
96支/盒
性能及用途
电泳点样
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文献和实验对于完全装液法来说,这种技术的灵活性更高,因为分析者不需要更换样品环就可以进不同体积的样品。但这种技术需要进样器的取样体积有良好的精度和准度。 你是否注意到样品是被“反冲”(backflush)进入柱子的?实际上样品从一个方向进入样品环,然后从相反的方向冲出样品环。反冲对于完全装液法的结果没有影响,但对部分装液法就非常重要了。考虑到有的自动进样器可能装了很大体积的样品环(比如1ml),如果分析者在1ml样品环中加入10ul样品,反冲进入柱,则样品就会以“液塞”的形式和样品环中其他物质(流动
染色法:①细菌涂片经火焰固定,加石炭酸复红溶液,徐徐加热至有蒸气出现,切不可沸腾。染液因蒸发减少时,应随时补充,防止染液蒸干。持续染5min(奴卡菌需要加长时间),水洗,甩干。②滴加3%盐酸乙醇脱色,不时摇动玻片至无红色脱落为止,水洗,甩干。③加吕氏美蓝复染液数滴复染1min,水洗。④干后显微镜下镜检观察结果,抗酸杆菌染成红色,非抗酸杆菌为蓝色。 金胺O-罗丹明B染色法:①细菌涂片固定后加第1液30~90s。②弃去第1液后加第2液染15min。③用第3液脱色1~2min,水洗。④滴加第4液染30
蛋白根本挂不上.),是不是理论IP与实际有相差? 理论上的和实际是有差别,但是不会这么大,你的样品中盐的含量高不高呢,有盐也会挂不住的。 51) 我的酶还算比较稳定,4C下活性至少三天不丧失,也有报道一周不改变,-20C时间就更长了。 我分别用了0.5M,1M的NaCl洗柱子,测蛋白浓度还是很低,中间有几个管浓度较高,然后测酶活却发现活性依然很低,上柱前测的还有441IU/10ul,而收集管里的顶多只有20IU/50ul。 所以,我很怀疑它到底挂在柱子上没有,于是我检测了一下上柱后用初始缓冲
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