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SIGMA C7698-5G 纳拉霉素A

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  • ¥1245
  • Sigma-Aldrich
  • 进口
  • C7698-5G
  • 2025年07月16日
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      2-8°C

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    • 英文名

      Cycloheximide

    • 库存

      有现货

    • 供应商

      浙江羽翔生物科技有限公司

    • CAS号

      见瓶身

    • 规格

      5G

    属性

    生物来源

    microbial

    检测方案

    ≥94% (TLC)

    形式

    powder

    储存条件

    (Tightly closed. Dry. Keep in a well-ventilated place. Keep locked up or in an area accessible
    only to qualified or authorized persons.)

    颜色

    white to off-white

    溶解性

    ethanol: soluble, clear to hazy

    抗生素抗菌谱

    fungi
    yeast

    作用机制

    protein synthesis | interferes

    储存温度

    2-8°C

    SMILES字符串

    [H][C@]1(C[C@@H](C)C[C@H](C)C1=O)[C@H](O)CC2CC(=O)NC(=O)C2

    InChI

    1S/C15H23NO4/c1-8-3-9(2)15(20)11(4-8)12(17)5-10-6-13(18)16-14(19)7-10/h8-12,17H,3-7H2,1-2H3,(H,16,18,19)/t8-,9-,11-,12+/m0/s1

    InChI key

    YPHMISFOHDHNIV-FSZOTQKASA-N

    一般描述

    Cycloheximide是一种戊二酰亚胺娄抗生素,通常来源于灰色链霉菌。它可用作真核细胞中蛋白质生物合成的强效抑制剂,其机理是破坏翻译中的转运步骤,从而有效阻止翻译延伸(translational elongation)。在微生物学领域,作为酵母和真菌抗性菌株的选择剂它起到关键作用,在受控实验环境中非常重要。

    在细胞生物学和生物化学研究领域,Cycloheximide体现出与诱导细胞凋亡有关的双重特性,即根据细胞类型不同诱导或抑制细胞凋亡。快速且可逆的作用令其成为研究细胞过程和测定蛋白质半衰期的理想选择。Cycloheximide也在生物医学研究中得到广泛应用,它抑制体外(生物体外)研究的真核细胞中的蛋白质合成,去除Cycloheximide则可快速逆转其作用。这一特性使Cycloheximide成为细胞生物学、生物医学和生物化学研究的最佳选择,为实验带来了精准的控制和多功能性。

    应用

    • 在酵母菌株中,Cycloheximide已被用作Cycloheximide追踪实验中的蛋白质合成抑制剂。
    • 它已被用于抑制哺乳动物细胞中的翻译。
    • 它已被用于抑制真菌生长

    生化/生理作用

    作用机制:真核生物中的翻译抑制导致细胞生长停滞和细胞死亡。CHX被广泛用于抗CHX的酵母和真菌菌株的选择、蛋白质合成的受控抑制以检测短寿命蛋白质和蛋白质表达的超诱导作用、以及诱导凋亡或促进通过死亡受体诱导的凋亡。

    活性谱:具有抑制酵母和真菌如念珠菌、曲霉、酵母菌和青霉的活性

    特点和优势

    • 适用于多种研究应用的优质抗生素
    • 常用于细胞生物学和生物化学研究

    其他说明

    保存于密闭容器内,置于干燥通风处。置于干燥处保存。

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    图标文献和实验
    该产品被引用文献

    Drosophila ZIP13 is posttranslationally regulated by iron-mediated stabilization.

    Biochimica et biophysica acta. Molecular cell research (2019-06-24)
    Junxuan Xu, Zhihui Wan, Bing Zhou
    PMID31229649
    摘要

    Drosophila ZIP13 (dZIP13, CG7816/ZIP99C) belongs to the SLC39A family and is connected to iron homeostasis in the fruit fly. In this study, we show that dZIP13 level is strongly regulated by iron. In addition to a mild response to iron at the mRNA level, dZIP13 is strongly regulated at the protein level. This posttranslational regulation by iron also happens when dZIP13 is expressed in the yeast Saccharomyces cerevisiae. Iron functions to stabilize dZIP13. Domain-swapping experiments between dZIP7 (CG10449/ Catsup) and dZIP13 suggest that the N-terminus of dZIP13 is necessary to mediate this iron regulatory process. Phylogenetic sequence comparison and structural modeling reveal potential iron-binding residues, confirmed by in vitro iron binding assays. Mutations of these potential iron binding sites at the N-terminus, as well as a likely iron binding site at the C-terminus of dZIP13, completely abolish the iron-dependent upregulation in the yeast and the fruit fly. Iron-responsiveness of dZIP13 is consistent with its key role in iron homeostasis. We speculate that this process of dZIP13 regulation, and that of IRE/IRP-controlled ferritin production, work together to better cope with iron repletion in the fly.

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