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- 文献和实验
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大量
- 英文名:
GST-Tagged Protein purification Kit II
- 保质期:
一年
- 供应商:
上海泽叶生物科技有限公司
- 保存条件:
见包装
- 规格:
2T
中文名:GST 标签蛋白纯化试剂盒II型(酶解)
英文名:GST-Tagged Protein purification Kit II
CAS:N/A
级别:N/A
分子量:N/A
分子式:N/A
纯度:N/A
储存条件:见包装
注意:I型为超声裂解法,II型为酶解法。均适用于可溶性和包涵体中His标签蛋白的纯化。
产品说明:
1.重组蛋白 N 端的 GST 谷胱甘肽 S 转移酶(Glutathione S Transferase)能提高重组蛋白的水溶性,所以常用于蛋白质重组表达。GST-谷胱甘肽亲和层析是利用 GST 标记的蛋白能与谷胱甘肽层析介质结合,并能被还原型谷胱甘肽洗脱的特点而建立,是目前分离纯化 GST 标记蛋白质的重要方法。
2.只能在非变性条件下使用,只可用于纯化没形成包涵体的 GST 标记蛋白。
3.提供 5 mL 浓度为 50%的谷胱甘肽-Agarose 介质,可吸附 5-20 mg GST标记蛋白质。
4.本试剂盒可用于2次GST蛋白纯化(50mL 体积的细菌)。
操作步骤:
一:重组蛋白的表达和细菌收集
1. 37℃振荡培养 50 mL 含表达质粒的细菌到 OD600=0.6-0.8。
2. 加 IPTG 到终浓度为 0.1 mM,30℃振荡培养 3 h 或 22℃振荡培养 8 h(或过夜)。
3. 4℃ 5000 g 离心 10 min 收集 50 mL 表达菌液,弃上清。
4. 用30 mL 1×PBS 缓冲液重悬细菌沉淀,4℃ 5000 g 离心 10 min,弃上清。沉淀可直接用于裂解或放-80℃保存。
二: 谷胱甘肽层析柱的准备
1.将谷胱甘肽-琼脂糖介质充分混匀后,取2.5 mL加入到预放了一片筛板的层析柱中。
2.用 7.5 mL 预冷的洗涤液洗柱,共三次。
三: 裂解
(1)超声破碎细菌:在50mL 的细菌沉淀中加入 2.5 mL 冰浴的超声裂解缓冲液,再加入 125 uL PMSF(10 mg/mL)溶液,冰上超声裂解菌体直到在显微镜下看见绝大多数细胞破裂。超声参数需根据仪器型号自行摸索,但裂解物必须不粘稠,否则会堵塞层析柱。
(2)酶法裂解细菌:加入 2.5 mL 冰浴的酶解液,再加入 125 uL PMSF(10 mg/mL)溶液,冰上放置 30 分钟。
四:纯化
1.将超声或酶法得到的细胞裂解物在 13,000 g 4℃离心 10 min去除未裂解细胞和裂解细胞碎片以防堵柱,所得上清即含可溶性 GST 标记蛋白。预留少量(如 100uL)作为裂解液留样,其余用于纯化。
2. 将上清液加入谷胱甘肽层析柱中,层析柱预先用盖子将底端的漏液口堵上。让细菌裂解液和介质在 4℃结合 1-12 h 后放开底端的盖子让重力使上柱液自然流出,收集并保存穿透液用于 SDS-PAGE 电泳。
注意:可将穿透液重新加入此层析柱中,以提高结合率。
3.用 10 mL 1×PBS 缓冲液洗柱,收集并保存穿透液(含杂蛋白)并预留100uL 作为穿透液留样,其余在确认实验成功后再丢弃。
4.用 0.2-0.5 mL GST 洗脱液洗柱,收集并保存穿透液,此穿透液即纯化的GST 标记蛋白样品。由于它可能含蛋白酶污染,所以纯化样品不能在 4℃长期放置,需留 100uL 左右用于后续浓度测定或/和 SDS-PAGE 电泳,其余放-80℃长期放置。
5.用裂解液留样(四-1)、穿透液留样(四-3)和纯化样品留样(四-4)进行蛋白定量或/和 SDS-PAGE 分析。
注意:本操作没有预先脱盐,故只能用 Bradford 法或 OD 检测法测定裂解液留样、穿透液留样和样品留 样的蛋白浓度。按 OD 检测法,1 OD280 约等于 0.5 mg/mL 蛋白。由于GST 的分子量为 26 KD,所以在 SDS-PAGE 胶上,GST 标记蛋白将比天然蛋白大 26 KD。
五:谷胱甘肽层析柱的恢复资料(自备试剂)
1. 用 3 倍介质体积的 6 M 盐酸胍处理柱子 10 分钟。介质为 2mL 则用 6mL,下同。
2. 用 3 倍介质体积的超纯水处理柱子 10 分钟。
3. 用 3 倍介质体积的缓冲液一(0.5 M NaCl,0.1 M TrisHCl,pH 8.5)处理柱子 10 分钟。
4. 用 3 倍介质体积的缓冲液二(0.5 M NaCl,0.1 M TrisHCl,pH 4.5)处理柱子 10 分钟。
5. 再重复 3-4 步两次。
6. 用 3 倍介质体积的超纯水处理柱子 3 次。
7. 若需要立即使用,则用 3 倍介质体积的 1×PBS 缓冲液处理柱子 2 次。堵上漏口,加 3 倍介质体积的 1×PBS 缓冲液洗涤后立即使用。
8. 若长时间不用,则上步的 1×PBS 改成 20%的乙醇,其余操作完全相同。
特别提示:本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
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文献和实验一、GST pull-down 基本知识1. GST pull-down 概念GST pull-down:是利用重组技术将探针蛋白与 GST 谷胱苷肽巯基转移酶融合,融合蛋白通过 GST 与固相化在球珠上的 GSH 谷胱甘肽结合。从而分离出能与融合蛋白相互作用的蛋白的技术。2. GST pull-down 研究对象二、GST pull-down 原理1. GST pull-down 结合原理2. GST pull-down 分离原理三、GST pull-down 流程1. 蛋白的抽提与纯化:①
mL PBS 1X 4- Centrifuge (1pulse at 500g) 5- Resuspend in 10 mL PBS 1X (stable for one month at 4 _ C) b) Extract preparation: 1- Transform BL21 or any appropriate bacterial strain with your GST-fused cDNA. Always use freshly transformed cells
with 1/2 volume of 50% GST beads at 4C rocking on the Nutator for 30-60 minutes. 50 ml conical Falcon tubes work well. Pour into a BioRad Column and drain lysate. Save 100 ul of depleted lysate. Load 2.5 ul for SDS-PAGE. Wash beads with 3 column volumes
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