迪夫快速染色液(Diff-Quik Staining Solution)

迪夫快速染色液(Diff-Quik Staining Sol

ution)
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  • 信裕生物
  • XY10571
  • 中国
  • 2025年07月12日
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    • 英文名

      Diff-Quik Staining Solution

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      上海信裕生物科技有限公司

    • 保存条件

      常温

    • 规格

      3×100mL;3×250mL;3×500mL

    迪夫快速染色液(Diff-Quik Staining Solution)

    产品简介

    Diff-Quik染色是在Wright染色基础上改良而来的一种快速染色方法,是细胞学检查中常用的染色方法之一,与Wright Stain类似都是利用Romanowsky Stain技术原理改良而来的,染色结果与瑞氏染色液也极其相似,但迪夫快速染色所需的时间极短,一般90s以内即可完成染色。
    迪夫快速染色液含固定液,主要用于血细胞涂片、骨髓涂片、阴道分泌物涂片、脱落细胞涂片等染色,非常适合用于批量浸染,且背景清晰无沉渣。
    该染色液仅用于科研领域,不宜用于临床诊断或其他用途。

     

    试剂组分

    Components 3×100mL 3×500mL Storage
    Diff-Quik Fixative 100mL 500mL RT
    Diff-QuikⅠ 100mL 500mL RT
    Diff-Quik Ⅱ 100mL 500mL RT

    存储:原包装未开封的染色液有效期为24个月,每次使用完应及时拧紧瓶盖,以免挥发或变质。

     

    样本要求

    1、血细胞涂片染色:要求新鲜全血或EDTA·K2抗凝血。
    2、阴道分泌物(妇科白带)涂片染色:新鲜标本离开人体涂片后,需尽快以火焰或酒精固定,以避免细胞变形。
    3、骨髓涂片染色:涂片制成后,应在空气中快速摇动或扇干,防止细胞皱缩变形或因空气潮湿而溶血,绝对不能用高温或火烤。
    4、脱落细胞涂片染色:采取检体并涂片,待检涂片固定可采用自然干燥法或湿片固定液固定法(具体操作可根据不同检体及所采用的 固定液所对应的规范操作要求进行)。一般情况下若采用湿片固定法,标本浸泡时间稍长些,效果会更佳。若采用湿片固定液固定标 本,固定液用后需经常过滤,更换,防止细胞交叉污染。

     

    使用参考

    以新鲜血液涂片为例:

    1、把迪夫试剂 Diff-Quik Fixative 和 Diff-QuikⅠ以及 Diff-QuikⅡ分别适量分装倒入染缸或者烧杯等容器中。

    2、将制备好的玻片玻片插入固定液 Diff-Quik Fixative 1~2s,再取出,再插入 1~2s,再取出,反复 5 次(将玻片竖立在滤纸上吸去多余固定液)。

    3、然后将玻片插入 Diff-QuikⅠ 1~2s,再取出,反复 5 次(将玻片竖立在滤纸上吸去多余染液)。

    4、然后再将玻片插入 Diff-Quik Ⅱ 1~2s,再取出,反复 5次(将玻片竖立在滤纸上吸去多余染液)。

    5、用去离子水或无菌水漂洗。

    6、玻片干燥镜检。

    备注:制备好的玻片在分别染色时必须要在染色液中几次反复的浸入(每次浸入固定与染色的时间控制在 1~2s)与取出才能达到理想的染色效果,持续的浸染超过 5s 可能会导致染色效果不太理想。

     

    注意事项

    1、若需要强染或浅染可以增加或减少反复浸入与取出的次数,但不能少于 3 次以下;

    2、若要增强嗜酸粒细胞(Red)的染色,可以增加 Diff-QuikⅠ染色时的反复浸入与取出的次数;若要增强嗜碱性细胞(Blue)的染色,可以增加 Diff-Quik Ⅱ染色时的反复浸入与取出的次数;

    3、血液涂片或骨髓涂片应厚薄均匀,以免影响染色效果。

    4、脱落细胞涂片固定可采用自然干燥或固定液固定。

    5、染色液可重复使用,但不能多次重复,最好一周更新一次,若有沉淀物应过滤后使用。

    6、染色过深可用甲醇或酒精适当脱色,最好不复染。

    7、pH 值对染色有一定影响,载玻片应清洁、无酸碱污染,以免影响染色效果。

    8、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

     

    注意:说明书不定时更新,以收到产品时的说明书为主。

     

    Diff-Quik commonly used in histological staining to rapidly stain and differentiate a variety of smears, commonly blood and non-gynecological smears, including those of fine needle aspirates. It is based on a modification of the Wright Giemsa stain pioneered by Bernard Witlin in 1970. It has advantages over the older Wright Giemsa staining technique, as it reduces the 4 minute process into a simplified 15 second operation, and allows for selective increased eosinophilic or basophilic staining depending upon the time the smear is left in the staining solutions.

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