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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
224
- 保质期:
12个月
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
RT
- 规格:
50次
试剂盒组成:
| 组份 | 体积 |
| 溶液P1(Buffer P1) | 15mL |
| 溶液P2(Buffer P2) | 15mL |
| 溶液P3(Buffer P3) | 20mL |
| 去蛋白液PE(Buffer PE) | 30mL |
| 漂洗液PW(Buffer PW) | 12mL |
| 洗脱缓冲液EB(Buffer EB) | 10mL |
| RNase A(20mg/mL) | 1.5mg(75μL) |
| 吸附柱及收集管 | 50套 |
保存条件:
室温条件下,可保存12个月,更长时间保存可置于4℃。若溶液产生沉淀,可在室温下放置一段时间,或在37℃水浴中预热10min,以溶解沉淀。
使用建议:
如果所提质粒为低拷贝质粒或大10kb的大质粒,应加大菌体使用量,使用5~10mL过夜培养物,同时按照比例增加P1、P2、P3的用量,洗脱缓冲液EB应在65~70℃水浴预热,在吸附和洗脱时可以适当的延长时间,以增加提取效率。其它步骤相同。
注意事项:
- 溶液P1(Buffer P1)在使用前先加入RNase A(全部加入),混匀,4℃保存。
- 漂洗液PW(Buffer PW)使用前应加入48mL无水乙醇。
- 溶液P2(Buffer P2)低于室温会产生沉淀,使用前应检查是否出现浑浊,如有浑浊现象,50℃水浴加热溶解。溶液P2(Buffer P2)使用后请拧紧瓶盖。
- 溶液P2和P3对人体有刺激性,操作时请小心,不要直接接触。
- 提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。
- 去蛋白液PE可以有效去除残留的蛋白污染,当宿主菌为endA+ (TG1、BL21、HB101、ET12567、JM系列)等核酸酶含量较高的菌株时,强烈推荐使用去蛋白液PE。
操作步骤:
漂洗液PW在使用前按照试剂瓶所示体积加入无水乙醇,混合均匀。
- 取1~4mL过夜培养的菌液,加入离心管中,室温下10000rpm离心1min,收集菌体,并尽可能地吸尽上清。
- 向留有菌体沉淀的离心管中加入250μL溶液P1(Buffer P1) (请先检查是否已加入RNase A),使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌沉淀。
- 向离心管中加入250μL溶液P2(Buffer P2),轻轻颠倒离心管10次以混合均匀,然后静置5min至溶液粘稠而澄清。
注意:不要剧烈震荡,以免造成所提质粒中基因组DNA污染。此时菌液应变得清亮粘稠,所用时间不应超过5min,以免质粒受到破坏。如果溶液未变得清亮,可能菌体量过多,裂解不彻底,应减少菌体量。向离心管中加入250μL溶液P2,轻轻颠倒离心管混匀6~8次,使菌体充分裂解。 - 向离心管中加入350μL溶液P3(Buffer P3),立即上下颠倒混匀6~8次,此时出现白色絮状沉淀。室温下13000rpm离心10min。
注意:P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。 - 小心吸取上清液转移到带有收集管的吸附柱中,室温下13000rpm离心1min,移除收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于50μL,体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若后续做测序,需使用ddH2O做洗脱液,并保证其pH值在7.0~8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为了增加质粒的回收率,可将得到的溶液重新加入吸附柱中,再次离心收集。 - 向吸附柱中加入500μL溶液PE(Buffer PE),室温下13000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管。
注:溶液PE(Buffer PE)可以有效去除残留的蛋白污染,当宿主菌为endA+ (TG1、BL21、HB101、ET12567、JM系列)等核酸酶含量较高的菌株时,强烈推荐使用Buffer PE。 - 向吸附柱中加入500μL溶液PW(Buffer PW)(请先检查是否已加入无水乙醇),室温下13000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
- 重复操作步骤7。
- 将吸附柱放入收集管中,打开盖子,室温下13000rpm离心5~10min,目的是将吸附柱中残留的乙醇去除。
注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验,建议将吸附柱CM开盖,置于室温放置数分钟。
将吸附柱转移至一个的1.5mL离心管中,向吸附膜的中间部位滴加50~100μL洗脱液EB(Buffer EB)或ddH2O,室温放置2min,13000rpm离心1min,收集洗脱液。
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