- ¥350
- 钰博生物
- YB-00580-25
- 中国/上海
- 2025年07月09日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量
- 英文名：
BES Buffer（BES缓冲液），0.5M，pH6.0
- 保质期：
2年
- 供应商：
上海钰博生物科技有限公司
- 保存条件：
4-25℃
- 规格：
250mL
| 名称 | 编号 | 规格 | 价格 |
| BES Buffer（BES缓冲液），0.5M，pH6.0 | YB-00580-25 | 250mL | 350元 |
| 英文名称：BES Buffer（BES缓冲液），0.5M，pH6.0 运输：常温 保存：4-25℃ 有效期：2年 货期：1-3天 其他： 产品介绍： |
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pH缓冲液显示pH跟正常值差距过大
需要按仪器说明用标准缓冲溶液标定仪器，标定方法如下：
1）仪器预热后接上复合电极；
2）将选择开关调到PH档；
3）调节温度补赏旋钮白线对准溶液温度值（室温）；
4）斜率调节旋钮顺时针旋到底；
5）把清洗过的擦净的电极插入标准PH缓冲溶液中；
6）调节定位旋钮使仪器读数与该缓冲溶液当时温度下的PH值一致。
每一次测定后都必须用蒸馏水将电极洗净，用擦镜纸将电极表面的水吸干。
经过正常标定后，再反过来测标准缓冲溶液的PH值时，数据不会出现异常。
测定缓冲溶液ph值时为什么理论值与测量值误差较大
看看仪器和样品.一般不存在可见值和理论值.都是未知值.如果经常测 出现较大差距.要先看看 仪器和样品.使用PH计时用中性（6.86）定位,再根据被测样品的酸碱性选择4.01或9.18的标定.之所以用标准溶液定位,原因是我们用已知pH值的缓冲溶液将pH计校正到该pH下,才会使测定的样品准确度高.
pH值测定法的注意事项
(1)测定前，按各品种项下的规定，选择二种pH值约相差3个单位的标准缓冲液，使供试液的pH值处于二者之间。(2)取与供试液pH值较接近的第一种标准缓冲液对仪器进行校正（定位）,使仪器示值与表列数值一致。(3)仪器定位时，再用第二种标准缓冲液核对仪器示值,误差应不大于±0.02pH值单位。若大于此偏差，则应小心调节斜率，使示值与第二种标准缓冲液的表列数值相符。重复上述定位与斜率调节操作，至仪器示值与标准缓冲液的规定数值相差不大于0.02pH单位。否则，须检查仪器或更换电极后，再行校正至符合要求。(4)每次更换标准缓冲液或供试液前，应用纯化水充分洗涤电极,然后将水吸尽，也可用所换的标准缓冲液或供试液洗涤。(5)在测定高pH值的供试品时，应注意碱误差的问题,必要时选用适用的玻璃电极测定。(6)对弱缓冲液（如水）的pH值测定,先用邻苯二甲酸氢钾标准缓冲液校正仪器后测定供试液，并重取供试液再测,直至pH值的读数在1分钟内改变不超过±0.05为止；然后再用硼砂标准缓冲液校正仪器，再如上法测定；二次pH值的读数相差应不超过0.1,取二次读数的平均值为其pH值。(7)配制标准缓冲液与溶解供试品的水，应是新沸过的冷蒸馏水，其pH值应为5.5～7.0。(8)标准缓冲液一般可保存2～3个月，但发现有浑浊、发霉或沉淀等现象时,不能继续使用。除另有规定外，水溶液的pH值应以玻璃电极为指示电极，用酸度计进行测定。酸度计应定期检定，使精密度和准确度符合要求。
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文献和实验（pH6.8） 1.5 mol/L Tris•HCl（pH8.8） 10% SDS 10% 过硫酸胺（APS） 还原型 5XSDS 上样缓冲液 10X 电泳液缓冲液 10X 转膜缓冲液 1X 转膜缓冲液 10XTBS 缓冲液 1XTBST 缓冲液 封闭缓冲液: 1X TBST含5% w/v 脱脂牛奶或者 1X TBST 含 2%-5% 的牛血清白蛋白(BSA)。 操作步骤 根据待测蛋白分子量大小确定凝胶（分离胶）浓度制胶 上样使用适当的裂解液以及裂解方法裂解贴壁细胞、悬浮细胞或者组织
.00蛋白胶快速染色液100ml120.00蛋白转移缓冲液10x,500ml100.00可逆型转移膜染色液100ml120.00Tris-HCl Buffer,PH6.8(配浓缩胶）0.5M, 250ml100.00Tris-HCl Buffer,PH8.8(配分离胶）1.5M, 250ml100.00PBS buffer20x,500ml100.00PBST buffer20x,500ml100.00TBST buffer20x,500ml100.00TBS buffer20x,500ml100
1. 配胶缓冲液系统对电泳的影响? 在SDS-PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris-HCL缓冲系统，浓缩胶是pH6.7，分离胶pH8.9;而电泳缓冲液使用的Tris-甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低;而CL离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分子就介于二者之间泳动。由于导电性与电场强度成反比，这一区带便形成了较高的电压剃度，压着蛋白质分子聚集到一起
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