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- 2025年07月16日
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100
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1年
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100
- 供应商：
广州研创
- 规格：
4.6*150mm
血清蛋白手性色谱柱操作说明书
1.使用前注意事项
1) 色谱柱出厂保存在0.02％ 的NaN3水溶液中，使用前须先用超纯水以0.8 mL/min的流速冲洗色谱柱半小时，然后再换成分析样品所需的流动相；
2) 接入色谱柱前，必须用超纯水对色谱仪器系统进行冲洗，冲洗干净后再接上色谱柱；对可能含有有机溶剂的泵排液时，需取出色谱柱空排；
3) 该手性柱只适用于反相体系。
2.参考操作条件
| 柱 型 |
150 ´ 4.6 mm ,分析柱 |
250 ´ 4.6 mm ,分析柱 |
| 流动相方向 |
参照色谱柱标签上的箭头 |
|
| 典型流速 |
1.0 mL/min,不要超过1.2 mL/min |
1.0 mL/min,不要超过1.2 mL/min |
| 柱压范围 |
< 8.0 MPa (约1160 psi),不要超过10.0 MPa (约1450 psi) |
|
| 温 度 |
20 ～40 ℃ |
|
| 建议有机相比例 |
≤5％，不要超过10％ |
|
| PH值范围 |
5.0-8.0 |
|
3、流动相
| 醇类/水 |
C2H3N /水 |
| 5/95到0/100 |
5/95到0/100 |
反相流动相
1）反相流动相一般使用甲醇/水、C2H3N /水，流动相允许的 zui gao 有机相比例为10％， zui gao 的水相比例为100％；
2）当需要使用缓冲溶液时，缓冲液的浓度不宜太高，离子强度应控制在0～100 mM范围内；
3）色谱柱可承受的缓冲溶液PH范围为5.0-8.0，超过该范围时会降低色谱柱的寿命。
4、色谱柱保养
1） 强烈建议使用保护柱；
2） 流动相需使用新鲜的超纯水、色谱纯溶剂，现配现用；使用前需用0.2 mm滤膜过滤和超声脱气处理；
3） 尽量用流动相溶解样品。对于不溶于水的样品，用其他溶剂溶解后需用流动相稀释才可进柱分析，在进样前需过滤样品溶液；
4） 若流动相中不含缓冲盐组分，用20 mL 0.02％NaN3的水溶液冲洗后，放入冰箱内4 oC下保存；
5） 若流动相中含有缓冲盐，使用完毕后需马上用超纯水(不少于30 mL)把色谱柱内的缓冲液冲洗干净，再用20 mL 0.02％的NaN3水溶液冲洗，放入冰箱内4oC 下保存；
6） 建议不要长期在极端条件下使用色谱柱，以避免色谱柱使用寿命变短。
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文献和实验清白蛋白（Bovine Serum Albumin，BSA）和卵类粘蛋白（Ovomucoid，OV）。 α-酸性糖蛋白分子由181个氨基酸残基和40个唾液酸（sialic acid） 残基构成。α-酸性糖蛋白分子偏酸性，等电点为2.7。含有两个二硫键，性质很稳定。α-酸性糖蛋白分子可以共价键合到硅胶上，制成手性色谱柱，可以分离许多化合物。 α-酸性糖蛋白手性色谱柱使用的流动相通常为pH 4-7的磷酸盐缓冲液和很小比例的有机相。有机相首选异丙醇，如达不到分离要求，可以尝试乙腈，乙醇，甲醇或四
Glycoprotein，AGP），人血清白蛋白（Human Serum Albumin，HSA），牛血清白蛋白（Bovine Serum Albumin，BSA）和卵类粘蛋白（Ovomucoid，OV）。 α-酸性糖蛋白分子由181个氨基酸残基和40个唾液酸（sialic acid） 残基构成。α-酸性糖蛋白分子偏酸性，等电点为2.7。含有两个二硫键，性质很稳定。α-酸性糖蛋白分子可以共价键合到硅胶上，制成手性色谱柱，可以分离许多化合物。 α-酸性糖蛋白手性色谱柱使用的流动相通常为pH 4-7的磷酸
过夜。在干燥器中储存室温试管，可保存数年。包被有20μl氯甘脲试管碘化效率低。如果抗体在正常碘化反应中受损，可以使用。 2.准备分离标记抗体的凝胶层分析柱，体的凝胶层分析柱。排阻限制为20000～50000凝胶介质用于分离球形蛋白分子。选择中等粒度的凝胶微柱(直径约100μm）。按说明书准备装备1ml标记后，体积凝胶微柱的滤柱将被丢弃，因此应选择合适的滤柱。为了最大限度地减少碘化蛋白的非特异性组合，滤纸应至少先使用10倍体积的含0.02％叠氮钠的1％BSA/PBS然后再用10倍体积的PBS去除淋洗滤柱
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