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人的胰岛素样因子1 ELISA试剂盒

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  • 2025年11月17日
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      5000

    • 供应商

      蒂科生物

    • 检测范围

      详询

    • 检测方法

      ELISA

    • 应用

      科研实验

    • 适应物种

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      参考说明

    • 样本

      详询

    • 规格

      96T/48T

    人胰岛素样生长因子1定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测人血清、血浆或细胞培养上清液中的IGF-1浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系我们。

     

    IGF-1简介:

    胰岛素样生长因子1(IGF-1)是一种促进有丝分裂的多肽,体外能够促进包括肌细胞、骨细胞和软骨细胞和组织分化和维持生长。

    IGF-1是一个具三个内部二硫键的70个氨基酸残基的多肽,属于胰岛素家族,该家族包括胰岛素和耻骨松驰素等。IGF-1在结构和功能上与胰岛素都很近似,但比胰岛素在生长刺激方面活性更强。

    IGF-1在胎儿的发育、生长到成年阶段的调控有重要作用。它调控蛋白的合成,糖的利用。IGF-1在细胞的周期和调亡中也起重要作用。IGF-1的信号主要通过与I型受体结合后酪氨酸激酶的通路来实现调控的。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中IGF-1的浓度。IGF-1 捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的IGF-1 会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗人IGF-1 抗体后,抗人IGF-1 抗体与IGF-1 接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在IGF-1 将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,IGF-1 浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中IGF-1 浓度。

     

    IGF-1定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    人IGF-1预包被板

    12条/6条

    5X标准品稀释液

    20ml/10ml

    人IGF-1标准品

    2/1支(冻干)

    人IGF-1生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5 ml

    中止液

    5ml/3 ml

    封板胶纸

    3/2张

    说明书

    1份

     

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

    C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集;

    D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    注:人血清或血浆样本请用标准品稀释液稀释后再检测。

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在2~8℃。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

    12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作: 

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3. 将5×标准品稀释液用双蒸水或去离子水稀释(1份加4份水)。

    4.标准品:按标签复溶体积加入1×标准品稀释液复溶使IGF-1终浓度达到2000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为2000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                    

     4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育120分钟。如果是血清血浆样本,不同样本稀释比例不一样,一般范围在30~300倍,如无明确范围,建议从40倍稀释,如果样本浓度过高,超过检测范围,请加大稀释倍数后重新稀释检测。

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟。    

    6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。

    3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD值1

    典型OD值2

    OD平均值

    0

    0.2762

    0.315

    0.2956

    62.5

    0.3965

    0.4249

    0.4107

    125

    0.6524

    0.474

    0.5632

    250

    0.7956

    0.8326

    0.8141

    500

    1.1025

    1.0801

    1.0913

    1000

    1.4581

    1.6627

    1.5604

    2000

    2.1481

    1.9505

    2.0493

    人IGF-1参考标准曲线

    图片1.png 

    注意:本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为32.5pg/ml。

    2.特异性:与人FGF acidic,FGF basic,HGF,IGF-II,Insulin,PDGF-AA,PDGF-AB,PDGF-BB,TGF-β1,TGF-β2 ,VEGF

    等没有交叉反应。

    3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    1. Blundell, T.L. and R.E. Humbel (1980) Nature 287:781.

    2. Grimberg, A. and P. Cohen (2000) J. Cell. Physiol. 183:1.

    3. Hall, K. and V.R. Sara (1983) Vitamin. Horm. 40:175.

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