- ￥1786
- GE
- 10600023
- 2025年12月01日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 供应商：
Cytiva
- 规格：
300MMx4M 1/PK
1、性价比高，采用超大规格的膜，30cm*4m，每卷可以使用更久，每平方厘米单价更便宜；
2、质量优异，蛋白结合力高（>200μg/cm2)，背景低，可反复剥离；
3、可快速赔付：产品使用过程中出现问题我们会24h内给您回复，如果是产品质量问题两周内给您赔付。
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文献和实验减小，膜对低分子量蛋白的结合就越牢固。 通常用 0.45μ m 和 0.2μm 两种规格的 NC 膜。 大于20kD 的蛋白可用 0.45μm 的膜， 小于 20kD的蛋白就要用 0.2μ m 的膜了， 如用0.45μ m 的膜就会发生“Blowthrough”的现象。PVDF 膜灵敏度、分辨率和蛋白亲和力比常规的膜要高，非常适合于低 分子量蛋白的检测。但 PVDF 膜在使用之前必需用纯甲醇浸泡饱和 1-5 秒钟。 蛋白质常用的转移方法主要有两种：槽式湿转和半干转移。前者操作容易
）：BDNF（28 KDa）、Bactin（42 KDa）、LaminB（72 KDa），以及磷酸化蛋白（保密 43 KDa） WB用膜类型、孔径：PVDF（0.45）膜 转膜方式（恒压、恒流）：300 mA 恒流 转膜时间：60 min 转膜设备：湿转 Bio-Rad Mini 转膜缓冲液：25％甲醛 觉得这个浓度的甲醛可以有效降低电转的热量，而且使膜对蛋白的吸附效果较好，Marker转到膜上很鲜艳。 用立春红染色效果也很好。 蛋白来源
。我们推荐按照制造商的说明进行操作。应使用还原型凝胶，除非抗体数据表中推荐使用非还原性条件。凝胶百分比取决于蛋白质的大小：4～40 kDa12～45 kDa10～70 kDa15～100 kDa25～200 kDa20%15%12.5%10%8%四、将蛋白质从凝胶转移到膜上如下制备转移堆叠体：膜可以是硝酸纤维素或 PVDF，两者各具优点。用甲醇「活化」PVDF 1 分钟，并在制备堆叠体之前用转膜缓冲液冲洗 PVDF。可能需要对时间和电压进行一些优化。我们推荐按照制造商的说明进行操作。可在封闭步骤之前
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