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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 样本:
血清、血浆、组织液等液体样本
- 库存:
100
- 标记物:
HRP(辣根过氧化物酶)
- 适应物种:
人、动物
- 应用:
科学研究
- 检测方法:
酶联免疫
- 检测范围:
68.6-50,000pg/mL
- 供应商:
上海烜雅生物科技有限公司
- 规格:
96T
英文名称:CLIA Kit for Bone Morphogenetic Protein 9 (BMP9)
简称:GDF2; Growth Differentiation Factor 2
物种:Homo sapiens (Human,人)
实验方法:双抗夹心
反应时长:3h
检测范围:68.6-50,000pg/mL
灵敏度:最小可检测剂量小于等于27.5pg/mL.
样本类型:Serum, plasma, tissue homogenates, cell lysates, cell culture supernates and other biological fluids
特异性:本试剂盒用于检测骨形态发生蛋白 9(BMP9),经检测与其它相似物质无明显交叉反应。
由于受到技术及样本来源的限制,不可能完成对所有相关或相似物质交叉反应检测,因此本试剂盒有可能与未经检测的其它物质有交叉反应。
精密度:精密度用样品测定值的变异系数CV表示。CV(%) = SD/mean×100
批内差:取同批次试剂盒对低、中、高值定值样本进行定量检测,每份样本连续测定20 次,分别计算不同浓度样本的平均值及SD值。
批间差:选取3个不同批次的试剂盒分别对低、中、高值定值样本进行定量测定,每个样本使用同一试剂盒重复测定8次,分别计算不同浓度样本的平均值及SD值。
批内差: CV<10%
批间差: CV<12%
应用(仅供研究使用,不用于临床诊断!)
实验原理:将骨形态发生蛋白 9(BMP9)抗体包被于96孔微孔板中,制成固相载体,向微孔中分别加入标准品或标本,其中的骨形态发生蛋白 9(BMP9)与连接于固相载体上的抗体结合,然后加入生物素化的骨形态发生蛋白 9(BMP9)抗体,将未结合的生物素化抗体洗净后,加入HRP标记的亲和素,再次彻底洗涤后加入底物。加入底物后会产生辉光型光信号。发射光强度和样品中的骨形态发生蛋白 9(BMP9)呈正相关。用化学发光仪测定相对光单位(RLU),计算样品浓度。
实验流程:
1. 实验前标准品、试剂及样本的准备;
2. 加样(标准品及样本)100µL,37°C孵育1小时;
3. 吸弃,加检测溶液A100µL,37°C孵育1小时;
4. 洗板3次;
5. 加检测溶液B100µL,37°C孵育30分钟;
6. 洗板5次;
7. 加TMB底物90µL,37°C孵育10-20分钟;
8. 加终止液50µL,立即450nm读数。
稳定性:经测定,试剂盒在有效期内按推荐温度保存,其活性降低率小于5%。
为减小外部因素对试剂盒破坏前后检测值的影响,实验室的环境条件需尽量保持一致,尤其是实验室内温度、湿度及温育条件。其次由同一实验员来进行操作可减少人为误差。
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的转录 . 用 IGFBP-5 作为诱饵蛋白通过酵母双杂交观测与 U2 人骨肉瘤 cDNA 文库反应 . 结果发现与 FHL2 有相互作用, FHL2 含有 4 个半 LIM 结构域 . 把 FHL2 固定在蛋白质芯片上,加上 IGFBP3-6 四个蛋白和对照组作用一段时间后,用缓冲液洗去 . 通过 SELDI-TOF-MS 分析 , 发现只有 IGFBP-5 组中出现一个质量 28 732.6+H 的峰,而其他组则没有出现 . 证实 IGFBP-5 确实和 FHL2 作用从而调节骨的形成 [33
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