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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
72
- 英文名:
Extraction kit for genomic DNA from GMO
- 保质期:
12个月
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
RT(15-25℃)干燥条件下,可
- 规格:
200次
特别提示:包括转基因农作物基因组DNA提取试剂盒在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:转基因农作物基因组DNA提取试剂盒
英文名称:Extraction kit for genomic DNA from GMO
产品货号:WH0027
产品规格:200次
本试剂盒是特别针对GMO作物(转基因作物)PCR检测所开发的试剂盒。试剂盒A部分所含有的独特裂解液可针对性地将小麦、玉米、水稻、棉花和大豆五种主要作物的组织充分裂解,释放出核酸、蛋白质等相关组分,后续通过特效的RNA酶和酚/氯fǎng抽提可以最大限度的将RNA、蛋白质、金属离子等杂质除去,获得纯度和得率均良好的基因组DNA,以便于后续的PCR检测。
本试剂盒包含双组分简单型PCR反应系统,包含2×GMO PCRBuffer和GMO DNA Polymerase。GMO DNAPolymerase是采用抗体修饰的耐热聚合酶,2×GMO PCR Buffer中含有MgCl2、dNTPs、PCR反应稳定剂、优化剂和增强剂等多种成分,浓度为2×。具有快速简便、灵敏度高、特异性强、稳定性好等优点,适用于GMO作物的转基因PCR检测。
产品特点:
·适用性广:可对五大主要GMO作物进行高质量基因组DNA的提取。
·简单快速:可在2h内完成GMO作物基因组DNA的提取。无需大型冷冻离心机,对仪器设备要求较低,适于各级研究机构对GMO作物进行快速基因组DNA提取。
·高效特异:独特的抗体Taq聚合酶的缓冲液确保聚合酶高效扩增,比普通Taq聚合酶特异性更强。
提取实例:
分别对水稻、玉米、大豆、棉花和小麦的100mg叶片进行基因组DNA提取,重复2次。100μl洗脱,取3μl电泳,琼脂糖凝胶浓度为2%,6V/cm电泳20min。
分别对水稻、玉米、大豆、棉花和小麦的基因进行扩增,重复2次。20μl PCR反应体系,取6μl电泳,琼脂糖凝胶浓度为2%,6V/cm,电泳20min。
试剂盒组成:
| 组分 | 200T |
| 缓冲液PL | 160ml |
| RNase A(100mg/ml) | 1.25 ml |
| 洗脱缓冲液TE | 2×15 ml |
保存条件:室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月。
注意事项:(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1.样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。
2.建议采用新鲜叶片作为提取对象,基因组DNA得率和纯度易达到最佳水平。
3.所有的离心步骤都为使用台式离心机在室温下进行。
4.缓冲液PL在使用前请加入巯基乙醇,使巯基乙醇的终浓度为0.1%(V/V)。
使用方法:
使用前请先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
1.取植物新鲜组织约100mg或干重组织约30 mg,加入液氮充分碾磨。
2.将研磨好的粉末迅速转移到预先装有700μl 65℃预热缓冲液PL的离心管中(实验前在预热的缓冲液PL中加入巯基乙醇,使其终浓度为0.1%),迅速颠倒混匀后,将离心管放在65℃水浴20min,水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。
3.将离心管取出,轻甩以收集管盖及管壁上的液滴,加入6 μl RNase A(100mg/ml),混匀,室温放置10 min。
4.加入等体积苯fēn:氯fǎng:异戊chún(25:24:1),充分混匀,12000rpm (~13400×g )离心5 min。
注:若提取富含多酚或淀粉的植物组织,可再用等体积酚:氯fǎng(1:1)进行二次抽提。
5.小心地将上一步所得上层水相转入一个新的离心管中,加入等体积异丙chún,充分混匀。
6.12000rpm(~13400×g )离心5 min。
7.倒掉上清,加入500 μl 70%乙醇,充分混匀。
8.12000rpm(~13400×g )离心5 min。
9.重复步骤7、8。
10.将离心管倒置在干净的吸水纸上至乙醇挥发干净,确保沉淀在离心管中。
注意:乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。但是要避免过分干燥DNA沉淀,因为过于干燥的DNA很难溶解。
11.加入100 μl洗脱缓冲液TE进行DNA溶解,适当条件保存。
注意:如果DNA溶解缓慢,可65℃加热10-30 min加速溶解。
DNA浓度及纯度检测:
1.得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
2.DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40 μg/ml单链DNA。
3.OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用ddH2O,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
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