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此试剂盒有不同规格的浓缩柱,一次可处理5ml、10ml或40ml样本,可达到至少40倍的外泌体浓缩。此种方法操作简单,适合常规实验室的外泌体研究,有广泛的下游应用,如粒径分析,核酸提取,Western Blot,ELISA等,也可以进一步对外泌体纯化,如抗体偶联磁珠外泌体捕获和分离试剂盒(Cat.#EXOMBoCU-xx)或外泌体提取和纯化试剂盒(Cat.#EXORGxxCU-1)。
时间短,成本低,外泌体不丢失。
很容易操作,重复性好。
大体积样本可快速浓缩成小体积,一般可浓缩20-40倍。
可同时多个样本浓缩,且最终浓缩体积可根据实验需要灵活变化。
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文献和实验内处理样本,同时还应注意采血的针头大小以及取样的定点定时。 尿液:选用尿液作为样本时,一方面要注意选取中间段的尿液,确保尿液的新鲜度;另一方面收集样本后,要添加硫柳汞钠抑菌剂,防止尿液被污染。 卵泡液:生殖系统的样本是现在外泌体研究的一个重要系统,在不同的生理状态下卵泡液分泌的外泌体内容物会有不同。卵泡液的粘度比较大,分离难度相对大一点,在分离之前可能需要先浓缩。 脑脊液:神经系统这块目前有很多科研人员在用外泌体做功能和机制研究,其中脑脊液是神经系统做外泌体选择的比较合适的样本,但是脑脊液由于很难
文献中常用的分离外泌体的方法主要是超离法和试剂盒法,那这两种方法研究人员该如何选择呢?为了解决大家的疑惑,我们专门做了对比实验进行阐述。 四、超速离心法与试剂盒法比较 (一)实验分组和开展实验确定: 此实验共分为 3 组,每组设置 2 个重复,所选原始样本是 293T 细胞培养上清。 组1:超离法分离(UC-1,UC-2); 组2:使用某国外试剂盒 SXX(SXX-1,SXX-2); 组3:使用某国内试剂盒 UXX(UXX-1,UXX-2)。 开展
分化、肿瘤侵袭、促血管新生等生理过程,与多种疾病的发生和进程密切相关。 由于外泌体的特殊结构和功能,使得它具有潜在的应用价值,一方面可以作为诊断多种疾病的生物指标,另一方面也可以作为治疗手段,未来有可能作为药物的天然载体用于临床治疗。 三、如何分离外泌体? 外泌体的样本来源主要有细胞培养上清、血清/血浆、尿液、腹水、乳汁、脑脊液、唾液、滑液等,其中细胞培养上清、血清/血浆、尿液是最常见的来源。如果是使用细胞培养上清,要注意细胞培养中一定不能添加 FBS







