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- 润基
- EXOCCON05-30
- 2025年09月23日
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- 文献和实验
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30次
此试剂盒有不同规格的浓缩柱，一次可处理5ml、10ml或40ml样本，可达到至少40倍的外泌体浓缩。此种方法操作简单，适合常规实验室的外泌体研究，有广泛的下游应用，如粒径分析，核酸提取，Western Blot，ELISA等，也可以进一步对外泌体纯化，如抗体偶联磁珠外泌体捕获和分离试剂盒（Cat.#EXOMBoCU-xx）或外泌体提取和纯化试剂盒（Cat.#EXORGxxCU-1）。
时间短，成本低，外泌体不丢失。
很容易操作，重复性好。
大体积样本可快速浓缩成小体积，一般可浓缩20-40倍。
可同时多个样本浓缩，且最终浓缩体积可根据实验需要灵活变化。
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文献和实验离心管浓缩 3-5 倍（超滤柱上层液体即为浓缩后的样品），准备 50 mL 以上的浓缩液再使用本试剂盒提取外泌体。 8、细胞上清液的浓缩倍数该如何选定？ 由于不同细胞在不同培养条件下外泌体分泌量差异较大，因此针对上清液的浓缩倍数无法给出具体数值。建议先选定一个倍数进行样品浓缩，以外泌体纯化过程中EPF柱堵柱现象作为浓缩倍数是否合适的依据，如果 EPF 柱出现堵柱现象，则可适当降低超滤浓缩倍数。 9、加了 ECS 液离心之后无沉淀，这个现象正常吗？ 由于某些细胞（如悬浮细胞、干细胞、免疫细胞、神经
文献中常用的分离外泌体的方法主要是超离法和试剂盒法，那这两种方法研究人员该如何选择呢？为了解决大家的疑惑，我们专门做了对比实验进行阐述。 四、超速离心法与试剂盒法比较 （一）实验分组和开展实验确定： 此实验共分为 3 组，每组设置 2 个重复，所选原始样本是 293T 细胞培养上清。 组1：超离法分离（UC-1，UC-2）； 组2：使用某国外试剂盒 SXX（SXX-1，SXX-2）； 组3：使用某国内试剂盒 UXX（UXX-1，UXX-2）。 开展
到了细胞上清液时，依次离心去除细胞、细胞碎片后进行存储；通过超滤方法浓缩上清液体积，提高外泌体浓度；最后通过超离或者试剂盒的方法提取外泌体。 以上的方法针对制备科研级别的外泌体质量会大有提升，如果要针对大规模（几升以上）的则需要结合其他的方法来操作。 文章图文来源：宇玫博生物
