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- 英文名:
Boc-D-Lys(Boc)-OH
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20
- 供应商:
上海吉至生化科技有限公司
- CAS号:
65360-27-2
- 规格:
,50mg
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BCA蛋白浓度测定试剂盒,淋巴细胞分离液,彩虹蛋白maker,30%Acr/Bis(29:1) ,胰蛋白酶-EDTA 消化液(0.25%)
葡聚糖凝胶、茉莉酸甲酯、特美汀、胶原酶(1-5型,青链霉素混合液(100×),Percoll 细胞分离液
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文献和实验。虽然在生理情况下Schiff’s碱合成反应是可逆的,但大多数的Schiff’s碱参与到后面的连接反应,少数逆转反应不影响结果。因此分子仍然可以附着到膜上。另一种假说是基于在聚合反应生产的化合物中几乎没有胺的性状,所以推测Schiff’s碱通过胺基群聚合形成。而事实上天然核酸的胺基基团因嘌呤或嘧啶环的存在而不起化学反应。因此,任何核酸和膜的连接反应都是由在探针合成中引入胺基(如N6-6-aminohexyl(d)ATP or N6-6-aminohexyl(d) CTP)的末端和醛基结合形成。连接到膜介质
,其它成分相同,也能获得相同的增殖效果。细胞可以用常规方法液氮冻存、复苏,冻存培养基为N2加入100g/L的胎牛血清。 悬浮培养的细胞种植到经多聚赖氨酸处理的培养皿中,培养基为含有20g/L FBS的DMEM/F12/N2。经一段时间的培养后进行免疫细胞化学检查。 0.01M PBS洗去培养液,4g/L的多聚甲醛固定 15min;PBS洗3次,每次5min; 2.5g/L Triton X-100处理15min;PBS洗3次,每次5min;含有1g/L马血清的一抗37℃处理1.5h,4℃过夜
培养乳鼠心肌细胞的缺氧/复氧(A/R)损伤模型和缺氧预处理(APC)模型
原代心肌细胞培养及APC模型的制作参照先前报道的方法[2]。即取出生后1-2 d乳鼠心尖部组织, 胰酶消化, 离心后用含20%小牛血清的DMEM培养基制成细胞悬液, 过滤, 按差速贴壁分离法纯化心肌细胞, 以1×105 cells/cm2接种于24孔板, 每24 h更换培养液。贴壁生长2 d, 于实验前24 h更换为无血清DMEM培养基, 随机分组, 每组双平行孔, 重复4次操作。缺氧/复氧(anoxia/reoxygention, A/R)模型的制作: 首先将培养基用N2在密闭容器中
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