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裸鼠成瘤

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  • 2026年01月20日
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    专业承接各类裸鼠、大鼠、小鼠、兔等动物模型建立以及后续检测服务,模型建立包含裸鼠皮下瘤、原位瘤、糖尿病模型、胃炎模型、急性肺损伤、肺纤维化、子宫内膜异位、白癜风、痛风、骨缺损、肝纤维化、关节炎、脓毒症、支气管哮喘、抑郁症、白血病、脑缺血再灌注、骨质疏松、酒精性肝病、学习记忆障碍、胃溃疡、急性心肌缺血、感染性休克、肝硬化等动物实验模型建立,以及后续各项检测。

      在生命科学研究领域内,进行实验研究所需要的基本条件可以总括为:实验动物、设备、信息和试剂。实验动物作为生命科学研究中的基本要素之一,在很多领域的科学研究中,充当着非常重要的安全试验、效果试验、标准试验的角色,尤其在药物有效性和安全性评价中发挥着不可或缺的作用。

      安徽乐奥贝生物技术公司可以独立开展包括大鼠、小鼠、裸鼠、豚鼠、兔等常见实验动物在内的动物造模及相关实验,现已熟练掌握近30余种不同类型动物模型的造模方法。

    裸鼠成瘤模型

    由于裸鼠的免疫缺陷,在一定情况下,不排斥来自异种动物的组织移植,因此,可用其建立理想的人类肿瘤可移植实验动物肿瘤模型。

    实验步骤

    1.细胞复苏

    从液氮中取出冻存的U87-MG细胞,迅速放入37℃水浴箱中,快速融化,加入含10%胎牛血清的DMEM/High培养基,接种于T25 培养瓶中,37℃,5%CO2孵箱常规培养传代。

    2.细胞传代培养

    弃培养瓶中旧培养液,用无菌PBS冲洗两遍,将胰蛋白酶-EDTA 1 ml加入到培养瓶中消化细胞,倒置相差显微镜下观察,待镜下细胞出现筛网状空隙时倒掉胰酶,加入含10%胎牛血清的DMEM/High培养基至覆盖培养瓶底,移液管反复吹打,使细胞悬浮,将细胞悬液移入离心管中1000r/min离心5min,弃上清液,按1:2~1:4传代,在37℃、5%CO2孵箱进行培养,2~3天换液,选择对数期的细胞用于实验。

    3.接种制备

    加入无菌PBS,轻轻吹打细胞沉淀,混匀成细胞悬液,细胞计数,使细胞密度达到 1×107个/ml;在超净台中,用75%酒精消毒裸鼠背部,于皮下(大部分选择腋下接种)注射0.1 ml细胞悬液。

    4.结果观察

    一般接种7-10天左右可以见到皮下开始出现肿块。

    注意事项

    1.接种细胞的选择:取处于对数生长期的细胞。细胞的状态是成瘤实验的关键,细胞达80-90%左右密度为宜。细胞消化后应尽快接种到裸鼠皮下,一般尽量在半小时内完成,途中将细胞悬液放在冰上降低细胞的代谢。

    2.裸鼠的选择:选择的裸鼠一般在5-8周龄,体重18-20g左右;种植部位选择血供丰富区域,如腋窝中后部、腹股沟中上部;左手拇指和食指捏紧裸鼠颈背部皮肤,小拇指夹住裸鼠尾巴进行保定。

    3.接种方式:接种前用枪将细胞悬液充分的吹散,防止细胞成团而降低细胞成活率;接种时,针头在皮下进针深一点,约1cm深,减少注射后细胞悬液从针眼溢出。

    4.结果判定:肿瘤大小测量一般为1周两次,用游标卡尺测量瘤体最长径(a)和最短径(b),按公式计算肿瘤体积(V)的大小,V(mm3)=1/6πab²。

    服务项目

    可包含裸鼠的购买、饲养、造模、取材及后续指标的检测等。

    实验流程

    裸鼠饲养→细胞培养→模型制备→结果判定

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    相关实验
    • 「外泌体 + 环状 RNA」国自然双热点助力肿瘤研究发表高分文章

      -caspase9 蛋白水平。裸鼠成瘤的结果表明,外泌体处理能明显增加 HCT116 细胞的转移(Fig.1)。 Fig.1 CRC 来源的外泌体能促进 CRC 的增殖、迁移和侵袭 2. circPACRGL 在添加了肿瘤来源外泌体的 CRC 细胞中显著上调 作者接着分别用外泌体处理了 HCT116 和 SW480,收集了 Ex-HCT116 和 Ex-SW480 细胞样本,再用未处理组做对照,进行了 RNA 二代测序。结果发现,circPACRG 在 Ex-HCT116和 Ex-SW

    • 你已经是个成熟的细胞了,该学会自己做实验了

      ,无法达到持续表达外源基因的目的。一般用转染试剂进行质粒转染,多是瞬时转染。非常好,你能区分什么时候需要构建稳转株吗?细胞:需要构建稳转株的,有这些类型:1. 长期在目的细胞中研究基因功能;2. 部分蛋白半衰期极长,瞬时 RNA 只能干扰表达,无法去除已经表达的目的蛋白,想要实现更好的基因干扰效果;3. 想要实验更精准,筛选拷贝数适量的细胞进行实验研究;4. 需要用诱导表达系统的,主要是一些致死基因或者是需要时空表达的;5. 需要用细胞做动物实验的,比如裸鼠成瘤等。以下实验就不需要构建稳定

    • 细胞系(cell line)或细胞株(cell strain)的建立、鉴定、管理

      。(3)细胞是否发生转化和恶变:主要通过核型分析、细胞生长行为观察(是否丧失接触抑制)、裸鼠成瘤实验等进行鉴定。4)细胞有无发生交叉污染,主要通过同工酶及DNA指纹图谱技术进行鉴定。 2、对肿瘤细胞系的鉴定 对肿瘤细胞系的鉴定主要围绕其恶型性展开,染色体的异常、接触抑制和密度依赖生长特性的改变、集落形成能力、裸鼠成瘤、动物体内的侵袭生长,以及某些基因、分子水平的特征均是肿瘤细胞鉴定的方向。 (二)已建立细胞系的管理 对已建立的和经过鉴定的细胞系,一般除保

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