牛源性成分单重荧光PCR检测试剂盒

牛源性成分单重荧光PCR检测试剂盒
一、简介
本试剂盒用一对牛源性成分特异性引物，结合一条特异性荧光探针，用荧光PCR技术对牛源性成分DNA进行体外扩增检测。本试剂盒中牛源性成分的探针报告基团为FAM。

二、牛源性成分单重荧光PCR检测试剂盒用途
该试剂盒适合于各种饲料及其它样品中牛源性成分的检测。 

三、试剂盒组成(48T)
组成成分 数量 规格
牛物种荧光qPCR反应液(Bos-qPCR MIX) 1管 600μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(Bos-PTC) 1管 50μL/管

四、牛源性成分单重荧光PCR检测试剂盒储存条件及有效期
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围
ABI系列，Bio-Rad系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品采集与DNA提取
6.1 样品采集
样品的采集按照国家标准《饲料中牛羊源性成分的定性检测定性聚合酶链式反应(PCR)法》(GB/T 20190-2006)要求进行。
6.2 DNA提取
可采购生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、牛源性成分单重荧光PCR检测试剂盒检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Bos-qPCR MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 15µL N×15µL
向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(Bos-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃ 延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM，淬灭基团：NONE，请勿选择ROX 参比荧光。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。 
（2） 阳性对照(Bos-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明牛源性成分核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明牛源性成分核酸阴性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行牛源性成分qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明牛源性成分核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。