肉毒杆菌AB型双重荧光PCR检测试剂盒

肉毒杆菌AB型双重荧光PCR检测试剂盒
本试剂盒适用于检测粪便、水、血液等样本肉毒杆菌(BL) A/B型DNA，用于肉毒杆菌(BL) A/B型感染的辅助诊断。其检测结果仅供参考。
【原理】
本试剂盒用一对肉毒杆菌(BL)A/B型特异性引物和一条特异性荧光探针，经过裂解提取DNA，后者在Taq DNA聚合酶作用下，配以FQ-Buffer(内含Mg2+、Tris-HCl等)、四种核苷酸单体（dNTPs）等成分，通过PCR-荧光探针体外扩增法对肉毒杆菌(BL) A/B型DNA进行体外扩增，从而达到快速检测肉毒杆菌(BL) A/B型之目的。
肉毒杆菌AB型双重荧光PCR检测试剂盒【组成】
名称 数量 规格
核酸提取液 1管 2ml/管
Taq 酶系 1管 50μl/管
BL-A/B-qPCR MIX 1管 1000ml/管
BL-A/B -阳性质控品 1管 50μl/管
阴性质控品 1管 250μl/管
肉毒杆菌AB型双重荧光PCR检测试剂盒【储存条件】-20℃保存，避免反复冻融。 
【试剂规格及有效期】48T/盒，有效期6个月。
【适用仪器】
双通道及以上PCR仪器。
【标本采集和保存与运输】
1. 人或动物：
采集新鲜粪便，取黏液脓血部位标本，密闭送检。
2．血液：
采集新鲜抗凝血(非肝素抗凝)，密闭送检。
肉毒杆菌AB型双重荧光PCR检测试剂盒【使用方法】
1． DNA提取
1.1 粪便：挑取米粒大小粪便(尽可能取黏液脓血部分)，于放置有0.5ml生理盐水的离心管中，振荡混匀，13000rpm离心2分钟。弃上清，沉淀中直接加入100μl DNA提取液充分混匀，沸水浴10min，13000rpm离心5min取上清4μl做PCR反应。
1.2 水标本：取水样3ml，13000rpm离心2min；弃上清，沉淀中直接加入100μl DNA提取液充分混匀，沸水浴10min，13000rpm离心5min取上清4μl做PCR反应。
1.3 血液标本：取2ml抗凝血，静置待自然分层，吸取上层（血浆层）及中层（Buffy coat层），13000rpm离心2分钟。弃上清，沉淀中直接加入100μl DNA提取液充分混匀，沸水浴10min，13000rpm离心5min取上清4μl做PCR反应。
2．PCR扩增
从试剂盒中取出BL-A/B-qPCR MIX、Taq酶系，室温融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N（N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照），每个测试反应体系配制如下表：
试剂 BL-A/B-qPCR MIX Taq酶系
用量 20μl 1μl
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入21μl，向每管中加入处理后样品或BL-阳性质控品和阴性质控品4μl，10000rpm瞬时离心10秒。将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内，推荐循环条件:94℃→2分钟，后94℃ 30秒→55℃ 45秒，40个循环。
荧光通道选择：检测选择FAM通道和HEX/VIC/JOE通道。如果使用ABI系列仪器，请务必在passive reference和quencher处均选择“NONE”。
3. 结果分析判定
FAM通道：Ct值≤35肉毒杆菌A型为阳性；Ct 值在35-40个循环之间，为灰区，需要进行重复试验。重复试验之后，如果Ct 值仍然在37-40个循环之间，判断肉毒杆菌A型为阳性，没有荧光值增长肉毒杆菌A型为阴性。
HEX/VIC/JOE通道：Ct值≤35肉毒杆菌B型为阳性；Ct值在35-40个循环之间，为灰区，需要进行重复试验。重复试验之后，如果Ct值仍然在37-40个循环之间，判断肉毒杆菌B型为阳性，没有荧光值增长肉毒杆菌B型为阴性。
【质控标准】
阴性质控品：FAM和HEX/VIC/JOE通道全部阴性。
BL-阳性质控品：FAM和HEX/VIC/JOE通道的Ct值均应小于30.0。
以上条件应同时满足 ，否则，此次试验视为无效。
【注意事项】
初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。