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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
20
- 细胞类型:
I类
- 品系:
优良品
- 组织来源:
ATCC来源
- 物种来源:
ATCC来源
- 细胞形态:
贴壁
- 器官来源:
ATCC来源
- 运输方式:
常温运输或冻存干冰运输
- 年限:
3~5代
- 生长状态:
优良
- 规格:
5×106cells/T25细胞培养瓶
细胞收到后处理:
细胞名称 CL-11(人结肠癌细胞) 细胞形态 上皮样细胞 生长特性 贴壁生长 传代方法 1:2传代 传代情况 2~3天换液 培 养 基 DMEM/F12+20%FBS
细胞在培养瓶中培养至良好状态后灌满完全培养液并封好瓶口是细胞运输的最好办法。收到细胞回到自己的实验室后,先打开外包装,用75%酒精喷洒整个瓶消毒后放到超净台内,严格无菌操作,培养箱静置2-4小时。镜下观察:未超过80%汇合度时,可将瓶装的完全培养液收集至离心管中,加入6ml完全培养基,放入37℃、5%CO2孵箱培养;超过80%汇合度时,根据情况传代或者冻存,具体操作见细胞培养步骤。(注意发货的是密封培养瓶的话,放入培养箱培养记得培养瓶盖子拧松)
细胞培养步骤:
1)复苏细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入5mL培养基混合均匀。在1000RPM条件下离心5分钟,弃去上清液,补加4-6mL完全培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入6cm皿中),培养过夜。第二天换液并检查细胞密度。
2)细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。
1、对于贴壁细胞,传代可参考以下方法:
1. 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
2. 加1-2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2min,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加5ml以上含10%血清的完全培养基终止消化。
3.轻轻吹打细胞,完全脱落后吸出,在1000RPM条件下离心8-10分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。
4. 按5-6ml/瓶补加培养液,将细胞悬液按1:2到1:5的比例分到新的含5-6 ml培养液的新皿中或者瓶中。
PS:若客户收到2ml小管细胞,收到细胞后,用75%酒精喷洒整个管子消毒后放到超净台或安全柜内,严格无菌操作;将小管细胞转移至T25培养瓶或6cm培养皿,加入5ml左右完全培养基混匀,放入培养箱过夜培养后查看细胞密度:若密度未超过80%,换液继续培养,视情况传代或者冻存。若密度超过80%,可直接进行传代(方法同上)。
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文献和实验the role of Smads and ATF-2 in cardiomyocyte differentiation of P19CL6, a clonal derivative of murine P19 cells. Although P19CL6 efficiently differentiates into cardiomyocytes when treated with dimethyl sulfoxide, P19CL6noggin, a P19CL6 cell line
稳定细胞株构建的第一个步骤就是细胞转染,这项实验的原理大家都清楚,但是为什么一上手就会出现多种问题,在实验第一步就栽了跟头呢? 是细胞转染方法不对头?还是实验过程中的某个因素影响了转染效率?了解本文这11个注意事项,让你的细胞转染实验顺利通关! 所谓转染,是指在真核细胞里导入具有生物功能的核酸并核酸的生物功能。通常选用的转染方法包括物理介导法(如电穿孔法、显微注射和基因枪等)、化学介导法(如磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、多种阳离子物质介导法)、生物介导法(如原生质体转染、病毒介导转染
白细胞介素 IL-11 IL-11主要产生细胞:骨髓基质成纤维细胞 IL-11氨基酸数目:178 IL-11分子质量(kDa):19 IL-11受体:11LllR;CDl30 IL-11主要生物学活性:促进B细胞抗体分泌;促进浆细胞瘤生长;促进IL-3、IL-4等刺激骨髓干细胞、祖细胞和巨核细胞分化和增殖;促进脂肪形成抑制因子,刺激肝细胞分泌急性
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