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- 文献和实验
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695
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1年
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北京百奥莱博科技有限公司
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-20℃
特别提示:包括500bp DNA ladder(500~5000bp)在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:500bp DNA ladder(500~5000bp)
产品规格:100T(2×250μl)
本产品是由8条带状双链DNA条带组成的DNA Ladder,适用于琼脂糖凝胶电泳中DNA条带的分析。含有1×loading buffer,可根据实验需要,直接取2-5μl电泳,使用方便,电泳图像清晰。8条带的大小包括500,1000,1500,2000,2500,3000,3500,5000bp。其中2000bp条带为100ng/5μl,其余条带浓度为50ng/5μl。
使用方法:
1. 取2-5μl本产品加入到琼脂糖凝胶的加样孔中(每1mm加样孔宽度加1μl,如果加样孔较宽,可以适当增加上样量)就行电泳。
2. 建议电泳条件:凝胶浓度为1.0%,凝胶长度8cm,电泳电压4-10v/cm,电泳时间35-40分钟。
3. 通过EB染色后紫外灯下观察条带。
注意事项:
1. 琼脂糖的质量对DNA的电泳有很大影响,电泳时请尽量使用质量优等的琼脂糖。
2. 请使用新鲜配制的电泳缓冲液和新鲜配制的琼脂糖凝胶进行电泳,以保证Marker良好的分离效果。
储存条件:-20℃,有效期1年。
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文献和实验【求助】492bp片段跑胶比500的marker要大(如图)!为何?
stb1986 PCR产物492bp(经过测序验证),可是多次琼脂糖电泳条带却明显比500的marker要大(如图),不知原因是什么呢?GC比例为30%,可是G+C与A+C的分子量差别不大啊,请问有战友试过类似情况不?原因何在?谢谢! liupeiyanxiaohai 我也遇到过, 认为是maker不准,可以换个marker试试 qst1981 我也遇到过一样的问题 我想
;还有一个原因是你设置的电压太高,最好是2~4v/cm,跑4~6小时比较合适(2)“我是按说明书上0。8%的琼脂糖”:凝胶浓度太低了,把凝胶浓度加大到2%,放心做,没问题的(3)“说明书上说混合温和”:那是怕你混匀太剧烈导致细胞基因组DNA断裂啊,注意很轻轻的混匀(4)“收集凋亡细胞时离心时转速”:我在实验室中是5000rpm,离心5min,我觉得足已mmyycc :我的ladder总是只有一条带,与对照组差别不大,用的是100v,1-1.5h,不知道是不是这个原因?溴酚兰跑到什么位置合适
(2)“我是按说明书上0。8%的琼脂 糖”:凝胶浓度太低了,把凝胶浓度加大到2%,放心做,没问题的 (3)“说明书上说混合温和”:那是怕你混匀太剧烈导致细胞基因组 DNA断裂啊,注意很轻轻的混匀 (4)“收集凋亡细胞时离心时转速”:我在实验室中是5000rpm,离心5min,我觉得足已 mmyycc :我的ladder总是只有一条带,与对照组差别不大,用的是100v,1-1.5h,不知道是不是这个原因?溴酚兰跑到什么位置合适呢? chujun_hust
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